Реферат

Реферат Саркоцистоз крупного рогатого скота

Работа добавлена на сайт bukvasha.net: 2015-10-28

Поможем написать учебную работу

Если у вас возникли сложности с курсовой, контрольной, дипломной, рефератом, отчетом по практике, научно-исследовательской и любой другой работой - мы готовы помочь.

Предоплата всего

от 25%

Подписываем

договор

Выберите тип работы:

Скидка 25% при заказе до 21.9.2024





ВВЕДЕНИЕ

1. САРКОЦИСТОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

1.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ БОЛЕЗНИ
1.2. ИСТОРИЧЕСКАЯ СПРАВКА
1.3. МОРФОЛОГИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯ

                        1.3.1. Sarcocystis bovicanis

                   1.3.2. Sarcocystis bovifelis

1.3.3. Sarcocystis bovihominis
1.4. БИОЛОГИЯ СМАРКОЦИСТ
1.5. КЛИНИКА САРКОЦИСТОЗА

1.5.1. Клиника острого саркоцистоза.

1.5.2. Стадия развития паразита и клиническая картина острого саркоцистоза.

1.5.3. Клиника хронического саркоцистоза.
1.6. ПАТОГЕНЕЗ САРКОЦИСТОЗА

1.6.1. Патогенез острого саркоцистоза.

1.6.2 Патогенез хронического саркоцистоза.
1.7. ПАТМОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ

1.7.1. Патоморфологические изменения при остром саркоцистозе.
1.8.  ДИАГНОСТИКА

1.8.1. Серологическая диагностика саркоцистоза.

1.8.2. Серологическая диагностика.

1.8.3. Бактериологического исследования.

1.8.4.  Методы выявления саркоцист.

1.8.4.1. Компрессионный метод.

1.8.4.2. Гистологический метод.

1.8.5. Извлечение саркоцист в физиологическом растворе.

1.8.6. Методы обнаружения мерозоитов.

1.8.6.1. Метод Козелкина (1928)

1.8.6.2. Метод Kozar (1971)

1.8.6.3. Метод переваривания мышц в желудочном соке.

1.8.6.4. Метод переваривания мышц трипсином.

1.8.6.5. Гомогенатный метод.

                            1.8.6.6. Метод выдавливания мясного сока.
1.9. ЛЕЧЕНИЕ
1.10. ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА МЯСА, ИНВАЗИРОВАННОГО САРКОЦИСТАМИ

1.10.1. Качество саркоцистозного мяса.

1.10.2. Оценка мяса.

1.10.3. Обезвреживание мяса, инвазированного саркоцистами.
1.11. ПРОФИЛАКТИКА          ЗАКЛЮЧЕНИЕ  ВЫВОДЫ    И СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы.
  
В настоящее время саркоцистозу уделяется мало внимания. В доступной литературе имеются лишь единичные материалы, посвященные данной теме. При этом следует отметить, что саркоцистоз является серьезным протозойным заболеванием млекопитающих и птиц и может представлять опасность для человека.

Наиболее детально изучены виды Sarcocystis домашних животных, что объясняется большой практической значимостью саркоцистоза вследствие наносимого им значительного экономического ущерба животноводству и мясоперерабатывающей промышлен­ности.

Современная система веде­ния животноводства создала ряд не­благоприятных условий (скученность, гиподинамия, нарушения газообмена, терморегуляции и микроклимата), в целом увеличивающих нагрузку раз­личного характера на организм жи­вотных. Установлено, что при адапта­ции к измененной среде происходят значительные функциональные пере­стройки на организменном и клеточ­ном уровнях, нередко приводящие не только к снижению продуктивности животных, но и ослаблению резистен­тности их организма к различным за­болеваниям.

Поражаемость сельскохозяйствен­ных животных саркоцистами в этих условиях резко возрастает, а это в свою очередь способствует усугубле­нию течения других хронических забо­леваний. В связи с изложенным, осо­бое значение приобретают вопросы диагностики саркоцистозной инвазии in vivo и разработка профилактиче­ских мероприятий этого заболевания. С другой стороны, не менее важно ре­шение ряда проблем ветсанэкспертизы, связанных с постановкой диагно­за, оценкой мяса, его обезвреживани­ем и утилизацией.

Цель_работы. Целью нашей работы было - изучить морфологию возбудителя саркоцистоза у крупного рогатого скота, его влияние, как на животных, так и на качество мяса.

Задачи:   В соответствии с целью в своей работе мы поставили следу­ющие задачи:   

- дать определение болезни;

- ознакомиться с историей изучения саркоцистоза;

- изучить морфологию и биологию развития возбудителя;

- изучить клинические проявления;

- раскрыть механизмы патогенеза саркоцистоза крупного рогато скота;

- установить патоморфологические изменения в органах и тканях саркоцистозных животных;

-  изучить различные методы диагностики саркоцистоза;

- изучить особенности ветеринарно-санитарной экспертизы мяса, инвазированного цистами саркоцист.

1.1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ БОЛЕЗНИ

Саркоцистоз — относится к энзоотическим заболеваниям, протекающее в острой (редко) или хрониче­ской (субклинической) форме, возбудите­лем которого являются простейшие из рода Sarcocystis, характеризующееся образованием в мышечной ткани цист (мишеровых мешочков), заполненных трофозоитами. При остром течение  инвазии у животных наблюдают анемию, анорексию, кахексию, изъязвление кожи, хромоту, снижение гематокрита. При хроническом течение инвазии - миозит, миокардит, энцефаломиелит, что ведёт к потери массы тела, репро­дуктивным расстройствам и, в конечном итоге, к значительному снижению качества мяса.

1.2. ИСТОРИЧЕСКАЯ СПРАВКА

История изучения саркоцист насчитывает уже более 150 лет. В 1843 году немецкий ученый Мишер (Miescher) впервые описал характерные внутримышечные образования в скелетной мускулатуре домашней мыши, полагая, что это были скопления паразитов неизвестной природы. Впоследствии сходные образования в мышцах других животных стали описываться под разными названиями: "мишеровы мешочки", "рейновские тела", "псороспермии" (т.е. чесоточные спермии). И лишь в 1882 году Ланкестер стал называть их мясными цистами, или саркоцистами, и предложил для их обозначения соответствующее родовое название - Sarcocystis; видовое название miescheri имело целью увековечить имя первооткрывателя этих паразитов.

До начала 60-х годов ХХ века ошибочно полагали, что один хозяин может быть заражен только одним видом Sarcocystis. Недостаточный уровень знаний о саркоспоридиях в то время не давал ответа и на вопрос о путях и способах передачи мышечных цист от одного хозяина к другому. Правда, уже с середины 50-х годов род Sarcocystis стали сближать с родом Toxoplasma не только из-за формирования этими паразитами тканевых цист, но и из-за значительного ультраструктурного сходства внутрицистных организмов. Эти наблюдения, в свою очередь, стимулировали интерес к изучению жизненного цикла саркоспоридий, который был успешно расшифрован в 1972 году Рональдом Фэйером. После 1972 года началось широкое изучение саркоцистоза овец и в том числе патологоморфологических изменений.

Обстоятельное исследование проведено за рубежом Babudieri (1932), который дал полный обзор всех работ, опубликованных к тому времени. Людвик (1965), а затем Сенауд (1967) и некоторые другие исследователи детально описали субмикроскопическое строение этих паразитов.

В 1960- 1963 гг. чехословацкий ученый Чебек опубликовал серию работ, в которых сообщается об обнаружении саркоцист у грызунов, насекомоядных и других млекопитающих.

Изучение саркоцистоза в России началось в конце XIX века. З.К. Брант (1889), В.Я. Данилевский (1891), В. Шевяков (1900), А.Г. Алексеев (1912) и другие исследователи изучали видовой состав и некоторые вопросы эпизоотологии саркоцист у отдельных видов хозяев. До расшифровки жизненного цикла саркоцист сообщает Якимов  о степени инвазированности овец саркоцистами и патологии саркоцистоза. После 1972 года началось широкое изучение саркоцистоза овец и в том числе патологоморфологических изменений.

Опубликовано много сообщений по морфологии и био­логии видов саркоцист, обнаруженных у различных ви­дов животных. Многие вопросы морфологии и биологии саркоцист животных опубликованы в обзорных статьях Д. Н. Засухина, К. С. Вильяминова, Л. П. Дьяконова, а также 3. И. Кисляковой, О. В. Рыбалтовского. Кроме того, морфология и биология саркоцист до­машних и диких животных освещена в брошюре А. С. Бердыева

1.3. МОРФОЛОГИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯ

Саркоцисты КРС принадлежат к типу Protozoa (простейших), классу Sporozoa (споровики), отряду Coccidia (кокцидии), семейству Eimeriidae (эймерии), роду Sarcocystis (саркоцисты) и видам S. Bovicanis, S. Bovifelis и S. bovihominis.

1.3.1. Sarcocystis bovicanis.

Промежуточный хозяин — крупный рогатый скот (Bos taurus).

Окончательные хозяева—собаки (Canis familiaris), кой­от (С. latrans), волк (Canis lupus), красная лиса (Vulpes vulpes).

Хозяинная специфичность.

При скармливании гиенам и медведям саркоцист вида S.bovicanis не от­мечали выделения спороцист. Кошки, обезьяны, дикие свиньи, скунсы, хорьки, крысы, морские свинки, кролики при оральной даче саркоцист вида S.bovicanis спороцист не выделяли. Свиньи, обезьяны, крысы, мыши, кролики и ягнята саркоцистами S.bovicanis также не зара­жались.

Половые стадии

Спорогония у вида S.bovicanis наблюдалась в тонком кишечни­ке у экспериментально зараженных собак через сутки после инфицирования саркоцистами S.bovicanis. Развитие половых стадий в эпителиальных клетках кишечника со­бак наблюдали И. И. Вершинин (1974), A. Martinez-Fernandez, М. Sela, Е. Pereiro (1975), S. Ogassawara, Т. Nikitin, С. Е. Larsson et al. (1978); в эпителиальных клетках кишечника лисиц и волков— А. Гадаев, А. Абиджанов (1974).

Препатентный период S.bovicanis длится 9—10 дней, продолжительность препатентного периода в любом случае зависит от состояния пораженного жи­вотного (возраст, жизнеспособность и др.), дозы и вирулентности ин­фекционного начала.

Пролиферативные стадии

Стадия меронта (шизонта). Локализация. На 26—33-й день после инфицирования телят 250 тыс.— 1 млн спороцист S. Bovicanis обнаруживаются многочисленные шизонты в эндотелиальных клетках кровеносных сосудов надпочечников, желчно­го пузыря, слепой кишки, мозжечка, диафрагмы, сердца, почек, пече­ни, легких, лимфатических узлов, поджелудочной железы, тонкого ки­шечника, селезенки. Существует несколько поколений шизонтов вида S.bovicanis. Шизонты в эндотелиальных клетках артерий слепой кишки, почек, под­желудочной железы и головного мозга обнаруживаются на 15—16-й день после ораль­ного заражения телят 200 тыс. спороцист S. bovicanis.

Стадия саркоцисты. Локализация. Саркоцисты S.bovicanis обнару­живаются в мышцах сердца (И. И. Вершинин, 1975), в скелетных мышцах, в мышцах пищевода, языка, диафрагмы, в ЦНС. Саркоцисты S.bovi­canis предпочитают миокард.

Саркоцисты S.bovicanis обнаружены в мышцах сердца, в скелетных   мышцах,   в   мышцах   пищевода, в брюшных мышцах. По данным, мышцы сердца наиболее поражены.

Время обнаружения. Саркоцисты S. bovicanis появляются в миофибриллах пораженных органов крупного рогатого скота на 34-й день после ис­кусственного заражения животных спороцистами из фецес собак.

Стенка саркоцисты. Толщина стенки не превышает 0,5—1,0 мкм. При световой микроскопии оболочка саркоцисты S.bovicanis боль­шинством исследователей определяется как тонкостенная. В результате электронно-микроскопических исследований установлено, что первичная оболочка саркоцисты образует характер­ные протрузии — выступы, выросты, выпячивания.

У молодых саркоцист протрузии мелкие, булавовидные, у зре­лых— тонкие, пальцевидные, редко и нерегулярно расположенные по всей поверхности, длинные и короткие протрузии перемежаются .

Исследование стенки саркоцисты S.bovicanis по средством сканирующей электронной микроскопиипоказало длинные, узкие, плоские, лентовидные протрузии с конусовидной тупой верхушкой, иногда согнутой или завитой. Поверх­ность протрузии гладкая, протрузии инвагинированы только у основания. Длина протрузии 2,5—3,5 мкм, ширина — 0,2—0,3 мкм. В протрузиях фибриллы или микротрубочки не наблюдаются. Поверхность цисты покрыта мелкими гексагональными инвагинациями, поэтому кажется сотовидной. Ширина инвагинаций по диагонали 40—50 нм, глубина 25—40 нм.

1.3.2. Sarcocystis bovifelis.

Промежуточный хозяин — крупный рогатый скот (Bos taurus).

Окончательный хозяин — домашняя кошка (Felis catus), дикая кошка (Felis silvestris).

Половые стадии

Препатентный период S.bovifelis длится не более 12 и не менее 7 дней

Пролиферативные стадии

Стадия меронта (шизонта). Локализация. Меронты первой генера­ции вида S.bovifelis располагаются в эндотелиальных клетках мезентериальных и кишечных артерий, а так­же в эндотелиальных клетках мезентериальных лимфатических уз­лов. Меронты различной зрелости наблюдали с 7-го по 23-й день пос­ле искусственного заражения телят спороцистами S.bovifelis от ко­шек. Максимальное количество меронтов первой генерации на 10-й день после инфицирования. Размеры меронтов первого поколения достигали 37,2x22,3 мкм, размеры мерозоитов — 5,1х1,2 мкм. Меронты второй генерации автор находил в эндотелиаль­ных клетках капилляров миокарда, мышц бедра, диафрагмы, языка, глаза. Максимальное количество обнаруживалось на 16-й день после инфицирования. Меронты второй генерации различной зрелости отме­чались с 15-го по 23-й день. Размеры меронтов достигают 13,9х6,5 мкм. Таким образом, меронты второй генерации в 2 раза мень­ше меронтов первой генерации. Меронты первой генерации содержат более 100 мерозоитов, меронты второй генерации — 3-35 мерозоитов. Размеры последних не превышали 4,0x1,5 мкм. На 11-й день после инфицирования мерозоиты меронтов первой генерации обнаружива­лись в крови.

Стадия саркоцисты. Локализация. Саркоцисты S.bovifelis локали­зуются в мышцах сердца, в скелетных мышцах, в мышцах пишевода, языка, диафрагмы. Размеры саркоцист S.bovifelis на 110-й день после инфицирования телят спороцистами от кошек достигают 800х60 мкм, располагаются в мышцах нижней части пищевода.

Время обнаружения. Незрелые сарко­цисты (7,0x5,0 мкм) S.bovifelis обнаруживаются на 30—35-й день после заражения те­лят. Полностью дифференцированные саркоцисты наблюдаются на 105—110-й день.

Стенка саркоцисты. При световой микроскопии оболочка саркоцисты S.bovi­felis определяется как толстостенная. Толщина стенки составляет 4,0—5,5 мкм. В световой микроскоп хорошо видны радиальные полосы, иногда протрузии. При электронно-микроскопических исследованиях обнаруживается, что первичная оболочка цисты образует многочисленные палисадные, косо ориентированные к поверхности первичной оболочки ворсинчатые про­трузии. На поперечных срезах протрузии имеют полигональную кон­фигурацию, длина их колеблется от 4,0 до 5,5 мкм. Ширина протрузии саркоцисты S.bovifelis в 2 раза больше, чем у S.bovihominis. В протрузиях видны около 300 фибриллярных элемен­тов диаметром 15—18 нм.

1.3.3. Sarcocystis bovihominis.

Промежуточный хозяин — крупный рогатый скот (Bos taurus).

Окончательный хозяин — человек (Homo sapiens), ма­каки резус (Масаса rhesus), бабуины (Papio cynocephalus), шимпанзе (Chimpansee troglodytes).

Половые стадии

Размеры спороцист из фецес человека: 13,1-17,0х7,7-10,8 мкм, препатентный период — 9-10 дней.

Спороцисты, идентичные обнаруженным в стуле человека, зара­женного спороцистами S.bovihominis, наблюдали в фекалиях павианов и макак. Макаки, павианы и человек являются окончательными хо­зяевами вида S.bovihominis.

Пролиферативные стадии

Стадия саркоцисты. Впервые ооцисты, спорулирующие в эпители­альных клетках кишечника человека, описаны в 1860 г. R. Virchow. Позже С. М. Wenyon (1923) отнес тетразоидные спороцисты, наблю­даемые   в фецес человека, к Isospora hominis.   Было доказано, что зрелые ооцисты и спороцисты, отнесен­ные к S.hominis, язляются ин­вазионными половыми      стадиями двух видов рода Sarco­cystis, паразитирующих у крупного рогатого скота и сви­ней.

Локализация. Саркоцисты S.bovihominis  у крупного poгатого скота наблюдались в мышцах сердца, пищевода, языка, диафрагмы, в скелетных и жевательных мышцах.

Время обнаружения саркоцист. Отмечается появление саркоцист S.fusiformis в мышцах сердца на 48-й день после инфицирования телят спороциста­ми S.bigemina от человека. Образование саркоцист S. bovihominis в склетных мышцах и в миокарде начинается на 30—40-й день после заражения телят.

Стенка саркоцисты. При световой микроскопии оболочка сарко­цисты S.bovihominis определяется как толстостенная, с радиальной исчерченностью. Толщина стенки достигает в среднем 6,9 мкм. В результате электронно-микроскопических исследований установлено, что первичная оболочка саркоцисты форми­рует многочисленные ворсинчатые протрузии. Первичная оболочка равномерно складчатая. На трансверсальных срезах конфигурация протрузий у незрелых саркоцист круглая, у зрелых (на 98-е сутки) - полигональная; поверхность самих протрузий слегка волнистая; диа-

метр инвагинаций — 40 нм. В протрузиях имеются фибриллы (42—70) диаметром 15—18 нм. У незрелых саркоцист фибриллы в протрузиях располагаются параллельно, у зрелых — беспорядочно. Длина про­трузии на 62-й день после инфицирования достигает 2—3 мкм, на 98-й день — 6,9 мкм. Ширина про­трузии у саркоцист S.bovihominis в 2 раза меньше, чем у саркоцист S. bovifelis.

Таким образом, отличительными морфологическими признаками стадии саркоцисты считаются толщина стенки и ее исчерченность. По этим признакам можно провести дифференциальную диагностику саркоцист вида S.bovicanis (стенка тонкая, гладкая) от саркоцист видов S.bovifelis и S.bovihominis (стенка толстая, с ради­альной исчерченностью). В то же время дифференциальная диагности­ка саркоцист видов S.bovifelis и S. bovihominis затруднена. Световая микроскопия в этом случае не выявляет тончайших особенностей стен­ки саркоцисты. Размеры метроцитов, мерозоитов и спороцист различ­ных видов изменяются в тех же пределах — отличия могут быть до­стоверными, но практически тяжело уловимыми. Точная дифферен­циальная диагностика видов рода Sarcocystis по морфологическим признакам саркоцист, по сути дела, возможна только при использова­нии такого высокоразрешающего метода исследования, как электрон­ная микроскопия (сканирующая, трансмиссионная).

1.4. БИОЛОГИЯ СМАРКОЦИСТ

Дефинитивными хозяевами Sarcocyctis являются плотоядные животные.

Инвазионные мерозоиты (синони­мы: трофозоиты, эндодиоциты, эндозоиты, брадизоиты, цистозоиты и др.) обычно проникают в lamina propria центральной трети ворсинок кишечни­ка плотоядных, где развиваются в макрогамонты, содержащие макрога­меты (женские половые клетки), и микрогамонты, содержащие микрога­меты (мужские половые клетки). Та­ким образом, у Sarcocystis развитие мерозоитов до половых стадий про­исходит,   минуя   вегетативные    стадии. Отсутствие бесполого размноже­ния в кишечнике плотоядных живот­ных считается одним из основных от­личительных свойств видов рода Sarcocystis, имеющим большое значе­ние в дифференциальной диагностике от родов Toxoplasma, Besnoitia, Hammondia и др.

Размеры зрелых микрогамонтов в среднем 7,1 мкм х 4,8 мкм, макрогамонтов — 8,0 мкм х 7,3 мкм. Микрога­монты содержат до 11 микрогамет длиной 3,5—4,0 мкм и шириной 0,5 мкм.

Оплодотворение макрогамет мик­рогаметами происходит через 10— 12 часов после заражения плотоядных мерозоитами. В процессе оплодотво­рения кокцидийная микрогамета про­никает через клеточную оболочку в цитоплазму макрогаметы, при этом плазмалеммы их сливаются, а нуклеоплазма микрогаметы входит, сох­раняя свою целостность, в цитоплазму макрогаметы.

Оплодотворенная макрогамета развивается до стадии зиготы, которая в результате деления ядра превращает­ся в ооцисту, содержащую две спороцисты, в каждой из которых, в свою очередь, образуется по 4 спорозоита. У всех видов Sarcocystis спорогония протека­ет одинаково, причем во внешнюю среду с фекалиями плотоядных выде­ляются спорулированные ооцисты, со­держащие зрелые спороцисты. Это обстоятельство считается важнейшей особенностью видов рода Sarcocystis, отличающее его от Frenkelia, Isospora, Toxoplasma, Hammondia и других родов класса споровиков.

Длительность препатентного и патентного периодов зависит от количества инвазионного начала, резистентности организма плотоядных и, вероятно, от их индивидуальных особенностей. Препатентный период у различных видов Sarcocystis длится от 10 до 24 дней, патентный — от двух дней до трех месяцев.

Из внешней среды спорулированные ооцисты и зрелые спороцисты вместе с кормом попадают в желудок промежуточного хозяина (крупного рогатого скота), где высвободившиеся спорозоиты проникают в эндотелиальные клетки кровеносных сосудов (обычно артериол и венул) большинства висцеральных органов (почки, миокард, легкие, мозг и др.) и там превращаются в меронты (шизонты) первой генерации. Есть предположение, что и мерозоиты, и спорозоиты проникают в клетки посредством активной пенетрации или фагоцитоза, осуществленного эндотелиальными клетками.

В меронтах формируются мерогональные (шизогональные) мерозоиты, образование которых происходит в процессе шизогонии. В ходе шизогонии наблюдаются два типа ядерного деления: эндополигения и эндодиогения. Процесс эндополигении характеризуется значительным увеличением ядра спорозоита (зоита) с образованием протрузий (выпячиваний) различной формы, на верхушке которых возникает ядерное веретено. На каждом полюсе веретена появляются зачатки мембран и органелл мерозоитов. При эндополигении у Sarcocystis зачатки мерозоитов возникают до ядерного деления. Однако были получены данные, допускающие у Sarcocystis возможность митотического деления ядра зоита до образования мерогональных мерозоитов.

Наблюдается развитие меронтов двух-трех генераций. Меронты второй генерации развиваются из мерозоитов меронтов первой генерации и т. д. Саркоцисты развиваются из мерозоитов меронтов второй или третьей генераций.

Особый интерес представляет факт одновременного развития меронтов первой и второй генераций, а также второй и третьей генераций меронтов и мышечных саркоцист, содержащих инвазионные мерозоиты.

Структура меронтов второй генерации принципиально не отличается от структуры таковых первой генерации.

Подпись: РИС.1. 1. Схема строения мерозопта саркоцист: 1— полярное кольцо; 2 — коноид; 3 — фиб¬риллы; 4 — микронемы; 5 — дискообразная гранула; 6 — ядро; 7 — ядрышко; 8—ми¬тохондрии; 9 — центральная вакуоль; 10 — вакуоли; 11 — центральные гранулы

Внутри остатков клеток хозяина зрелые мерозоиты меронтов плотно упакованы и по форме напоминают типичные кокцидийные мерозоиты. Каждый мерозоит (рис.1.) содержит органеллы апикального комплекса (коноид, микронемы, роптрии) и клеточные органеллы (аппарат Гольджи, эндоплазматическая сеть, полисахаридные и липидные гранулы, митохондрии). Ядро овальное или круглое, обычно мелкое. Аппарат Гольджи примыкает к ядру совместно с митохондрией.

Мерозоиты Sarcocystis выделяются в циркулирующую кровь, способствуя таким образом генерализованному поражению организма. Инвазионное начало — мерозоиты — переносятся моноядерными клетками крови. Свободные мерозоиты лизируются плазменными антителами, поэтому транспорт их посредством лейкоцитов следует считать приспособительным явлением. Внутри лейкоцитов мерозоиты размножаются эндодиогенией. По сути дела, в лейкоцитах происходит третья по счету вегетативная мультипликация мерозоитов.

В незрелых цистах Sarcocystis вначале обнаруживаются только клетки округлой формы — метроциты, величиной от 3 до 20 мкм в зависимости от вида паразита. После многократного деления путем эндодиогении из метроцитов формируются банановидной формы мерозоиты — инвазионная для плотоядных стадия.  Примерно через два месяца после заражения в саркоцистах находят и метроциты, и мерозоиты, а через 3 месяца всю полость занимают мерозоиты, единичные метроциты встречаются только по периферии цисты.

Метроцит — крупная клетка овальной или округлой формы, пелликула которой образует глубокие инвагинации. В цитоплазме метроцита ультраструктуры апикального комплекса — коноид, роптрии и микронемы — отсутствуют, и по этому признаку стадия метроцита значительно отличается от мерозоитов других представителей Apicomptexa. Отсутствие ригидного наружного цитоскелета, включающего трехмембранную пелликулу и субпелликулярные микротрубочки, и определенных органелл апикального комплекса нарушает полярность их расположения в метроците, чем, по мнению Я. С. Казакаускайте, объясняется неспособность метроцитов внедряться в клетку хозяина и размножаться там путем эндодиогении.

Деление метроцитов отличается от эндодиогении тем, что приводит к формированию не двух, а четырех и даже шести дочерних клеток. В процессе цитокинеза путем образования глубоких инвагинаций формируются пелликулы. В результате такого деления образуются промежуточные клетки первой генерации, очень близкие к метроцитам, превращение которых в мерозоиты совершается постепенно в последующих генерациях. При этом происходит   постепенное развитие полярности, ибо в них появляются коноид, роптрии и микронемы. Края пелликулы постепенно выравниваются, образуются субпелликулярные микротрубочки, т. е. создается цитоскелет мерозоита.

Промежуточные клетки с определенной полярностью в расположении органелл делятся путем эндодиогении. Этапы формирования органелл в дочерних клетках: сначала появляется зачаток коноида и внутреннего мембранного комплекса. Микронемы образуются вне дочерних клеток в специальных зонах, возникающих вокруг вакуолей с электронно-плотным содержимым. Роптрии возникают как единичные образования.

Структурные характеристики мерозоитов Sarcocystis подобны таковым у других представителей Coccidia. В передней части клетки, имеющей заостренную верхушку, содержатся органеллы апикального комплекса: коноидальные или полярные кольца, образованные из внутренней мембраны пелликулы; субпелликулярные микротрубочки, отходящие от переднего полярного кольца; коноид, внутри которого простираются трубчатые ветви булавовидных роптрии, и многочисленные микронемы. В средней части клетки отмечаются булавовидные наконечники роптрии, рибосомы, полисахаридные гранулы, эндоплазматическая сеть; в задней — ядро с ядрышком, трубчатые митохондрии, аппарат Гольджи, рибо­сомы, липидные и полисахаридные гранулы.

Таким образом, на начальных эта­пах онтогенеза цисты образуются мет­роциты, которые, активно размножа­ясь, превращаются в инвазионную стадию — мерозоиты. В молодой ци­сте — много метроцитов, в зрелой — мерозоитов. Размеры цисты по мере ее созревания увеличиваются, стенка становится толще, ее внутренние ста­дии   изменяются   морфологически   и функционально. Стенка старой цисты, однако, разрыхляется, структура цисты разрушается.

В подавляющем большинстве случаев цисты различных видов Sarcocystis обнаруживаются в мышцах пищевода, диафрагмы, языка, сердца, скелета. Встречаются цисты в головном и спинном мозге, зрительном нерве, в мышцах глаза, бульбокавернозной мышце полового члена и других тканях. Обычно цисты располагаются между фибриллами мышечной ткани. Их размеры варьируют от макроскопических, видимых невооруженным глазом, до микроскопических.

1.5. КЛИНИКА САРКОЦИСТОЗА

Большинство авторов термин «саркоцистоз» используют по отно­шению к вегетативным стадиям развития паразита, а «саркоспори-диоз» — по отношению к половым стадиям. Термин «саркоспоридиоз» следует применять, когда речь идет о заболевании в целом, включая мышечную и немышечную фазы раз­вития в промежуточном и окончательном хозяевах, а термин «сарко­цистоз» — только тогда, когда речь идет о развитии мышечных цист.

До настоящего времени нет единого мнения о степени патогенности возбудителя для животных. Мнение о том, что саркоцистоз практически безвреден, так как не приводит к серьезным изменениям в мышцах и органах, проявляющимся какими-либо признаками болезни у зара­женного скота в последнее время оспаривается. Многочисленные данные свидетельствуют о том, что паразиты рода Sarcocystis могут вызвать значительные клинические проявления и патоморфологические нарушения и быть причиной гибели животных.

Известны случаи массового заболевания крупного рогатого скота, возбудителем которого являются паразиты рода Sarcocystis.

Впервые клинические признаки саркоцистоза описаны А. И. Corner, D. Mitchell, Е. В. Meads et al. (1963) в связи со вспышкой заболева­ния крупного рогатого скота неясной этиологии на ферме близ Далмени в восточном Онтарио (Канада). Заболевание получило название болезни Далмени, которая характеризовалась анорексией (потеря аппетита), анемией (малокровие), кахексией (истощение), генерали­зованным лимфаденитом, гиперсаливацией, возбужденностью и мы­шечным тремором, выпадением волос (особенно на кончике хвоста), локальными язвами в оральной полости и в пищеводе. Из 25 живот­ных погибли 17.

Заболевание, имеющее клинические признаки болезни Далмени, было воспроизведено в экспериментальных исследованиях. Крупный рогатый скот заражали спороцистами S. cruzi из фецес собак.

В естественных условиях острый саркоцистоз возникает редко.

1.5.1. Клиника острого саркоцистоза.

A. J. Johnson, P. Hildebrandt, R. Fayer (1975) скормили 22 телятам от 220 тыс. до 1 млн спороцист, полученных от собак и койотов, кото­рых заразили мясом, содержащим саркоцисты вида S.cruzi. На 23-й день после инфицирования наблюдали угнетенное состояние, ка­хексию, анемию, слабость. На 23—26-й день эти симптомы усилились. У 3 телят развились признаки поражения нервной системы — эпистотонус и вытягивание конечностей. Пять телят погибло на 27—50-й день. В другом опыте у 27 телят, которым скормили спороцисты S.cruzi от собак, на 16—20-й день после инфицирования температура тела повысилась до 40,5º—41°С, гематокрит снизился до 26,8%, содержа­ние гемоглобина упало до 5,5 %, аппетит ухудшился. К концу 21-го дня эти явления утихали. На 24—27-й день после заражения температура повышалась до 40°С, дыхание учащалось, наблюдали болезненность движений, анорексию, анемичность видимых слизи­стых оболочек и наличие на них кровоизлияний. Вторая фаза забо­левания длилась 36—48, максимально 72 ч. у 8 телят, инфицированных спороцистами S.cruzi, наблюдали интермиттирующую анорексию, потерю массы, один теленок погиб. У других 7 телят отмечали среднюю или слабую кахексию, периферический лимфаденит и анемичность слизистой. Ре­гистрировали также снижение содержания гемоглобина, увеличение количества сывороточных энзимов (лактат дегидрогеназы, аспартат аминотрансферазы, креатинфосфокиназы), высокие титры антител.

На 28-й день после инфицирования буйволов спороцистами S. fusiformis от собак явно выраженные клинические признаки от­сутствовали. В то же время отмечали нейтропению, увеличение общего числа эозинофилов и лимфоцитов, повышение уровня глутаминокса-латтрансаминазы, щелочной фосфатазы, снижение уровня глюкозы. Содержание мочевины и общего белка не изменялось. Нейтропения связана с миграцией нейтрофилов в раз­личные ткани, а увеличение содержания глутаминоксалаттрансаминазы и глутаминпируваттрансаминазы — с вовлечением в процесс пече­ни. Исследования, проведенные у телят буйволов post mortem и вы­явившие признаки дегенерации печени и почек, подтвердили такую точку зрения.

J. Mahrt, R. Fayer (1975) указывали на повышение сывороточных уровней креатинфосфокиназы, лактатдегидрогеназы, аспартатамино-трансферазы, увеличение количества лейкоцитов и развитие малокро­вия у телят в острой фазе саркоцистоза. Увеличение сывороточной концентрации лактатдегидроге­назы, аспартатаминотрансферазы и сорбитолдегидрогеназы на 25— 35-й день после инфицирования 4 телят породы Hotstein-Friesain спо­роцистами S.cruzi (200 тыс.) свидетельствует о повреждении скелет­ных мышц, печени и тканей других органов; увеличение содержания билирубина и азота мочи в крови — о быстром развитии анемии и раз­рушении эритроцитов. Азотемия — результат не только малокровия, но и прямого повреждения почек при саркоцистозе. Снижение содержания глюкозы, Са, Mg, Na, CI объясняется анорексией, ибо гипо­гликемия является быстроразвивающейся реакцией на голодание.

Подострый клинический синдром саркоцистоза у телят при естест­венном заражении наблюдали R. С. Giles, R. Tramontin, W. Kadel et al. (1980) в штате Кентуки (США). У телят отмечали крайнюю слабость, похудание, выпадение волос на ушах, на кончике хвоста, на дистальных отделах конечностей. Имелись многочисленные ссадины, межпаль­цевые изъязвления, на стенке копыта — трещины, сама стенка была некротизирована. Телята часто хромали. Наблюдали также эрозию cornea, генерализованную лимфаденопатию, мелкие изъязвления на морде, губах, краях языка, обширные язвы — на нёбе. R. Fayer, G. P. Lynch, G. Leek (1983) при заражении коров спороцистами S.bovicanis также регистрировали повышение температуры тела до 41—42°С, анемичность, летаргичность, выделения из носа, гиперсали­вацию, выпадение волос с кончика хвоста, слабость. Две коровы были вынужденно забиты, другие две коровы погибли.

Необычными признаками острого саркоцистоза у крупного рогатого скота, возникшего при заражении его в естественных условиях, явля­ются хромота, изъязвления кожи и слизистой, выпадение волос на хвосте (крысиный вид).

У 9-месячного бычка, погибшего в результате заражения спороцис­тами S.cruzi в естественных условиях наблюдалась анорексия, кахексия, опухание конъюнктивы век, гнойные выделения из глаз, затруднения при глотании, повышение температуры.

При остром саркоцистозе нередки аборты. Заражение стельных коров спороцистами S.cruzi в дозе от 150 тыс. до 1 млн приводило к мертворождениям и абортам. У коров в возрасте 5—8 лет со сроком стельности 5—6,5 мес после алиментарного зара­жения спороцистами S.cruzi от собак в дозе от 150 тыс. до 1,5 млн. наблюдали аборты наряду с тремором мышц, гиперсаливацией, анорексией, кахексией, выпадением волос, лихорадкой, уменьшением гематокрита и числа эритроцитов. Из 7 стельных коров, которым скормили от 200 тыс. до 1 млн спороцист S.cruzi, 4 коровы абортировали. У них отмечали потерю веса, высокую температуру с 15-го по 18-й день после инфицирования и с 28-го по 30-й день, тремор мышц, гипервозбужденность, снижение уровня гема­токрита, гемоглобина, эритроцитов, повышение энзиматической актив­ности сыворотки.

Большинство авторов, изучивших клинические признаки острого саркоцистоза, указывают на пищевой стресс — потерю аппетита и мас­сы тела. У молодых телят усиливается выделение с мочой некоторых основных азотных метаболитов, снижа­ется функция почек. В соответствии с гипотезой о корреляции между уровнем экскреции азотных метаболитов и уровнем мышечного обме­на веществ пришли к заключению о том, что острый саркоцистоз у телят является причиной усиленного мышечного катаболизма. Саркоцистоз приводит к ранней индукции глуконеогенеза и к редукции количества эритроцитов, лей­коцитов и гемоглобина. Максимальное снижение массы тела отмеча­лось на 25—30-й день после заражения. Примерно в это же время наи­более выражены были анорексия, анемия, выделение азота с мочой.

1.5.2. Стадия развития паразита и клиническая

картина острого саркоцистоза.

J. P. Dubey, С. A. Speer, G. P. Epling (1982) связывают проявление клинических признаков острого саркоцистоза у телят, зараженных спороцистами S.cruzi, с развитием и созреванием меронтов (шизон­тов) второй генерации и поступлением мерозоитов в кровь (вторая волна паразитемии) на 25—35-й день после инфицирования. Именно в это время большинство авторов наблюдали анорексию, анемию, пирексию, потерю массы тела, диарею, снижение показателя гематокри­та, азотемию и гипербилирубинемию, снижение функции почек, уси­ление катаболитических реакций в мышечных тканях, повышение энзиматической активности сывороточных и клеточных ферментов.

Согласно результатам экспериментальных исследований, проведен­ных J. P. Dubey, С. A. Speer, G. P. Epling (1982), развитие первой ге­нерации меронтов может вызвать повышение температуры до 40°С между 15-м и 19-м днями после заражения без проявления клиничес­ких признаков, причем вне зависимости от дозы инфекционного нача­ла. Каждый пик лихорадки совпадает с матуризацией и высвобожде­нием мерозоитов из меронтов первой и второй генераций соответствен­но. Авторы особо отмечают, что первый пик повышения температуры не всегда наблюдается, а степень лихорадки не связана с тяжестью клинической симптоматики.

Диарея у телят, искусственно зараженных спороцистами S. hirsuta, по мнению J. P. Dubey (1983), является результатом разрушения эпителиальных клеток артерий брыжейки и пищевода высвобождаю­щимися мерозоитами, а миозоит — следствием разрушения эндотели­альных клеток меронтами и проникновения мерозоитов в миофибриллы.

По мнению А. О. Heydorn, R. Gestrich (1976), основной причиной кахексии при саркоцистозе является значи­тельное влияние инфекционного процесса на уровень гематокрита.

Максимальное проявление клинических симптомов острого сарко­цистоза совпадает с развитием второй генерации меронтов и паразитемией. Тяжесть симптоматики определяется прямым повреждением кровеносных сосудов печени, почек, мозга, сердца и других органов меронтами и развитием генерализованной воспалительной реакции.

Наблюдаемые признаки острого саркоцистоза у крупного рогатого скота, вызванного S.bovicanis, включают также изъязвление видимых слизистых оболочек, выпадение волос на шее, боках, дистальных отде­лах конечностей и особенно на кончике хвоста (крысиный вид), хро­моту (растрескивание и отслоение задней стенки копыта).

1.5.3. Клиника хронического саркоцистоза.

Характеризуется образованием в мы­шечных тканях цист (мишеровых мешочков, заполненных мерозоитами). В зависимости от места локализации форма цист может быть веретеновидной, эллипсовидной, неправильной; их размеры — от микроскопических до 20 мм. При хронической форме саркоцистоза клиническая симптоматика зависит от интенсивности саркоцистозной инвазии: при слабой степе­ни инвазирования саркоцистоз протекает субклинически, при сильном заселении скелетных и других мышц саркоцистами отмечаются сер­дечная недостаточность, слабость мышц, неврологические нарушения, выпадение шерсти по бокам и на конце хвоста, полимиозит, энцефаломиелит, прогрессирующая ане­мия, истощение; при сильном пораже­нии мышц пищевода отмечается за­труднение глотания; миокарда — мио­кардит, сердечная недостаточность; ЦНС — различные дисфункции, вплоть до парезов и параличей.

1.6. ПАТОГЕНЕЗ САРКОЦИСТОЗА

1.6.1. Патогенез острого саркоцистоза.

После второй генерации шизонтов и развития второго пика паразитемии наблюдается клиника острого и подострого саркоцистоза. Развитие меронтов первой генерации вызывает воспалительные процессы, однако вне зависимости от дозы спороцист клини­ческие признаки в это время отсутст­вуют; их прояв­ление отмечается только при одновре­менном наличии меронтов первой ге­нерации и незрелых саркоцист.

Яркость клинической картины за­висит от дозы инвазионного начала. Введение в организм животных срав­нительно больших доз спороцист вы­зывает, как правило, развитие острого заболевания. Однако острый саркоцистоз в естественных условиях возника­ет спорадически и практически встре­чается редко. Развитие клиники ост­рого саркоцистоза, по всей вероятно­сти, связано с определенным количе­ственным порогом инфекционного на­чала. Субпороговые дозы спороцист при реинфекции, возможной в естест­венных условиях, вызывают развитие иммунитета у животных и ведут к хронической форме заболевания.

Основным и наиболее серьезным патоморфологическим изменением, на­блюдаемым при остром и подостром саркоцистозе, — это геморрагии, воз­никающие в местах созревания и раз­рыва меронтов. Генерализованные ге­моррагии наблюдаются одновременно с образованием меронтов второй гене­рации и выделением мерозоитов вто­рой генерации в кровоток.

В острой фазе болезни, вследствие повышенной проницаемости стенок кровеносных сосудов и обширных мас­совых кровоизлияний, развивается анемия. Снижение количества эритро­цитов и гемоглобина приводит к де­фициту кислорода, для компенсации которого усиливается работа сердца и легких — у животных отмечается тахикардия, учащенное дыхание. Мио­кардит, перикардит, очаговые лейко­цитарные инфильтраты, геморраги­ческие инфаркты с некрозом и другие гистологические изменения структуры миокарда ведут к тяжелым функцио­нальным нарушениям в работе серд­ца. Эластичность и сократимость мы­шечных волокон понижаются, разви­вается острая сердечная недостаточ­ность.

Воспалительные процессы при ост­ром саркоцистозе также обладают ге­нерализованным характером. Инфиль­траты в основном состоят из макро­фагов и лимфоцитов, реже встреча­ются нейтрофилы и эозинофилы. Воспалительная реакция в это время связана с инвазией мерозоитов второй и третьей генераций. Часть мерозоитов на пути к местам окончательной локализации погибает, и моноядерная инфильтрация является ответной реакцией. Обычно на 19-й день после инфицирования наблюдаются периваскулярные инфильтраты в почках, печени, легких и сердце.

Функциональная деятельность почек нарушается (олигурия, повышенное или пониженное выделение азота с мочой), что является следствием гломерулонефрита, геморрагии, окклюзии канальцев фрагментами эпителиальных клеток и выступления меронтов в просвет сосудов.

Гепатит при остром и подостром саркоцистозе встречается в большинстве случаев, являясь причиной повышения уровня аминотрансферазы и лактатдегидрогеназы.

Геморрагическое воспаление кишечника ведет к расстройству пищеварения, дегенеративно-воспалительные изменения в скелетной мускулатуре — к затруднениям движения животных, кровоизлияния в тканях ЦНС — к энцефаломиелиту и различным нервным проявлениям.

К одному из важнейших патогистологических признаков острого саркоцистоза следует отнести лимфаденит. В лимфоузлах при этом отмечаются геморрагии, отечность, купирование меронтов.

И. И. Вершинин (1982) высказал гипотезу о том, что в период шизогонии наряду с токсическим и механическим воздействием саркоспоридий патоморфологические изменения развиваются по типу аллергических реакций, вызванных сенсибилизацией организма продуктами обмена паразита. При саркоцистозе сенсибилизация организма в период бесполого размножения паразита происходит под воздействием шизонтов, мерозоитов и продуктов их обмена. Если животные впервые встречаются с саркоцистозной инвазией, то шизонты первой генерации и продукты их жизнедеятельности еще не вызывают аллергических реакций, но сенсибилизируют организм. На образование шизонтов второй генерации сенсибилизированный организм отвечает уже аллергическими реакциями, характер которых определяется видом саркоспоридий, дозой инвазионного начала, иммунологическим и общим состоянием животного.

Таким образом, патогенез острого саркоцистоза заключается, во-первых, в механическом воздействии меронтов на кровеносные сосуды жизненно важных висцеральных органов, вызывающем массивные геморрагии, во-вторых, в активации под влиянием продуктов жизнедеятельности паразита иммунологической системы животного-хозяина с индукцией воспалительных процессов пролиферативного характера, приводящих к диффузной и очаговой инфильтрации клеточными элементами тканей различных органов, в том числе сердца и печени, а также в сенсибилизации и аллергизации организма животного шизонтами, мерозоитами и продуктами их обмена веществ.

1.6.2 Патогенез хронического саркоцистоза.

Воспалительная реакция раз­вивается в ответ на пенетрацию мерогональных мерозоитов и образование незрелых саркоцист. В мышцах пораженных жи­вотных наряду с интактными сарко­цистами отмечается скопления лейкоци­тарного и гранулоцитарного (эозинофилы, нейтрофилы) пролиферата вок­руг дегенерирующих саркоцист, а вну­три очагов воспаления — части раз­рушенных саркоцист.

В мышцах инвазированных саркоцистами животных развивается эозинофильный    миозит.

Очаговые и диффузные инфильтраты, наблюдаемые при саркоцистозе, непосредственной связи с саркоцистами не имеют, ибо вокруг интактных саркоцист воспалительной реакции не отмечали.

Патогенетический механизм хронического саркоцистоза определяется развитием аллергической и воспалительной реакций на проникновение мерогональных мерозоитов последнего поколения в мышечные фибриллы, дегенерацию саркоцист и на продукты обмена веществ саркоцист.

Было установлено, что возбудитель саркоцистоза вырабатывает токсин, названный саркоцистином. Скармливая кроликам саркоцистозное мясо или вводя подкожно экстракты из пораженной ткани, наблюдали угнетение общего состояния, снижение аппетита и привесов, мышечную дрожь, диарею, параличи конечностей и ушей, сильное потоотделение и мочевыделение, взъерошенность шерстного покрова и другие признаки. В крови опытных кроликов снижалось содержание гемоглобина, эритроцитов, альбуминов, увеличивалось количество иммуноглобулинов, лейкоцитарная формула сдвигалась влево. На 7-й день после подкожного введения экстракта из мышц, инвазированных саркоцистами, кролики пали. При вскрытии обнаружено острое расширение правого желудочка сердца, застойная гиперемия, перерождение печени, увеличение селезенки и почек в 2—2,5 раза.

Саркоцисты и продукты их жизнедеятельности могут вызвать у белых мышей нарушение воспроизводительных функций, приводя к абортам, мертворождаемости и появлению уродств в потомстве.

Саркоцистин состоит из агглютинина и собственно токсина. Агглютинин вызывает агглютинацию кровяных телец человека, ягнят, кроликов. При действии токсина животные погибают с признаками, наблюдаемыми при отравлении ядами растительного (или бактериального) происхождения.

Саркоцистин — это продукт, образуемый в результате обмена веществ саркоцист, в связи с чем не исключено его выделение в окружающую среду — мышечную фибриллу — и проникновение в кровеносную систему. Попадание саркоцистина в кровь индуцирует воспалительную реакцию па чужеродное вещество, образование очаговых и диффузных инфильтратов, на первый взгляд, не связанных с саркоцистами. Саркоцистин как полиантигенный яд сенсибилизирует организм хозяина, вызывая аллергическое состояние его. Иммуноаллергическая реакция при рассматриваемом заболевании приводит к нарушению гистологической структуры миокарда и тяжелым функциональным расстройствам. Отек и клеточная инфильтрация, происходящие при этом, сопровождаются уменьшением эластичности волокон,   понижением    их сократимости, что ведет к сердечной недостаточности.

Саркоцисты в силу своего множества оказывают механическое действие на организм хозяина.

Таким образом, основной патогенетический механизм при хроническом саркоцистозе заключается в развитии аллергической и воспалительной реакций в ответ на пенетрацию мерогональных мерозоитов в мышечные фибриллы, дегенерацию саркоцист и на выделение в ткани хозяина продукта обмена веществ саркоцист — саркоцистина.

1.7. ПАТМОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ

Описание патоморфологических изменений у промежуточных животных при остром саркоцистозе, возникшем спонтанно в естественных условиях, при макроисследовании туши одногодичной телки, имевшей признаки острого саркоцистоза и заби­той в агональном состоянии, выявилены в скелетных мышцах очаговые серо-белые инфильтраты диаметром 3—4 мм. При гистологическом исследовании легких определялись инфильтраты, состоящие из одно­ядерных клеток, лимфоцитов и гистиоцитов. В лимфатических узлах наблюдались тромбоз средних и мелких артерий, разрыв эндотелия, аккумуляция лимфоцитов в периваскулярных тканях, многочисленные шизонты в эндотелиальных клетках артерий и капилляров; в миокар­де — одноядерные инфильтраты интерстициальных и периваскулярных тканей, очаги массивных инфильтратов под эпикардом, в некоторых мышечных волокнах — зрелые саркоцисты; в печени — массивные ин­фильтраты портальных вен, шизонты; в селезенке — огромное количе­ство шизонтов, окклюзию кровеносных сосудов шизонтами, перивас-кулярные одноядерные инфильтраты эндотелия, тромбоз артериол; в скелетных мышцах — некротические очаги, содержащие полиморфо-ядерные лейкоциты, гранулы, не поддающиеся идентификации, тром­боз артерий, окклюзию капилляров шизонтами, дегенерацию мышеч­ных волокон, инфильтраты из одноядерных клеток.

P. F. Frelier, I. G. Mayhew (1979) забили двух из восьми телят с признаками острого саркоцистоза, развившегося в результате их заражения спороцистами S.cruzi в естественных усло­виях. В легких первого теленка авторы выявили диффузную подострую пневмонию, характеризующуюся накоплением лимфоцитов, мак­рофагов, нейтрофилов; в некоторых артериях легких видны были интрамуральные геморрагии; в капиллярах и артериолах альвеол — шизонты и фибринозные микротромбы; в эндотелии гломерул — мно­гочисленные шизонты; в селезенке — мелкие некротические очаги с некрозом и тромбозом вен; в лимфоузлах — значительную лимфоид-ную гиперплазию паракортекса, скопление гистиоцитов, эритрофагоцитоз; в мозге и мозжечке — очаги лептоменингита, изредка шизонты в нейропиле; в эндотелиальных клетках слизистой кишечника — ши­зонты; в миокарде и печени — очаги инфильтратов, состоящих из лимфоцитов. У второго теленка особенно проявилась патология мышц в виде пролиферации ядер сарколемы, отечности и гиалиноза миофибрилл, сглаживания поперечной исчерченности. Процесс дегенера­ции мышц был наиболее выражен в диафрагме и массетере, где встре­чались также инфильтраты из лимфоцитов, плазменных клеток и мак­рофагов. В миокарде клетки Пуркинье имели вакуолизированную и гранулированную цитоплазму и были окружены лимфоцитами и мак­рофагами. В легких отмечались остатки геморрагии; в лимфоузлах — гиперплазия лимфоидной ткани, геморрагии, отечность, митозы, в моз­ге — негнойный лептоменингит.

При вспышке острого саркоцистоза у крупного рогатого скота в штате Кентукки (США) наблюдали в мышцах сердца и в скелетных мышцах, а также в мозге множество незрелых саркоцист, тяжелый или средней тяжести миокардит и миозит, очаговую дегенерацию миофибрилл, инфильтра­ты, состоящие из макрофагов, лимфоцитов, плазменных клеток. В мышцах сердца, языка, пищевода, диафрагмы инфильтраты из моно­ядерных клеток располагались периваскулярно в интерстиции. Миодегенерация характеризовалась потерей исчерченности, гиалинозом и некрозом сарколемы. Отмечались инфильтрация дегенерированных во­локон макрофагами, пролиферация ядер сарколемы. В мозговой тка­ни имелись мелкие очаги глиоза и моноядерной инфильтрации, менин­гиты. Наблюдались также очаговые дерматиты, гнойная бронхопнев­мония, язвы желудка и толстой кишки. У павшего при явлениях за­труднения дыхания 2-недельного теленка в корковом слое, в гломерулах, интерстициальной ткани почек, в эндотелиальных клетках арте­риол были обнаружены круглые, овоидные, веретенообразные шизон­ты. В центральной зоне печени отмечались облитерация сосудов, деге­нерация и некроз гематоцитов, в портальной зоне — умеренная лимфоцитарная инфильтрация, незрелые шизонты. В легких шизонты вы­являлись в интерстициальной ткани, в эндотелиальных клетках сосу­дов и альвеол. В плевре видны были умеренные лимфоцитарные ин­фильтраты, встречались шизонты. В миокарде шизонты не вызывали воспалительной реакции. Авторы связывают смерть теленка с присут­ствием большого количества незрелых шизонтов в тканях различных органов. Тяжесть заболевания, по мнению авторов, указывает на то, что заражающая доза превышала 220 тыс. спороцист.

Таким образом, патоморфологические нарушения в трех писанных случаях острого саркоцистоза у крупного рогатого скота, зараженного в естественных условиях, характеризуются лейкоцитарными, в основ­ном периваскулярными, очаговыми инфильтратами, локализованными в миокаоде, легких, почках, печени, селезенке, лимфатических узлах, скелетных мышцах, мышцах пищевода, диафрагмы, языка; пневмони­ей, лептоменингитами, окклюзией капилляров, артериол и артерий, вызванной увеличением объема эндотелиальных клеток, содержащих шизонты; интрамуральными геморрагиями, миокардитом, лейкоцитар­ным миозитом, миодегенерацией, связанной с одноядерной инфильтра­цией, пролиферацией ядер сарколемы, гиалинозом. У всех животных в эндотелиальных клетках кровеносных сосудов большинства исследо­ванных органов, как правило, наблюдали шизонты, в миофибриллах — незрелые и зрелые саркоцисты.

В опытах, проведенных И. И. Вершининым, В. И. Петренко, Л. И. Кундрюковой и др. (1982), двум месячным телятам скормили 3 и 5 млн спороцист S.bovicanis соответственно. На 25-й день после инфицирования телят убили из-за крайне тяжелого состояния. Упи­танность телят резко снизилась. При визуальном патоанатомическом Исследовании обнаружилось сильное увеличение всех наружных и вну­тренних лимфатических узлов с хорошо выраженной отечностью и то­чечным кровоизлиянием. В грудной и брюшной полостях находилась в небольшом количестве желтого цвета прозрачная жидкость. На се­розных покровах сычуга, преджелудков и особенно тонкого и толсто­го кишечника отмечали обширные кровоизлияния. Кровоизлияния на­блюдались также в мочевом пузыре (обширные, сплошные), в почках, поджелудочной железе, надпочечниках (точечные, пятнистые), эндо­карде (разлитые) и эпикарде, в легких (точечные). Мышцы были ко­ричневые с мраморным рисунком. При гистологическом исследовании отмечалась диффузная инфильтрация эозинофилами, лимфоцитами, клетками РЭС, плазматическими клетками, активная пролиферация эндотелия сосудов всех внутренних органов. Во всех исследованных органах и тканях обнаруживали шизонты второй генерации.

При вскрытии павшей стельной коровы Е. Rimaila-Parnanen, S. Nikander (1980) нашли в скелетных мышца множество зеленоватых уз­лов диаметром 1—2 мм. Микроскопически авторы установили массив­ный эозинофильный миозит, клеточную инфильтрацию, отечность, фиброзно-тканевую пролиферацию, саркоцисты. Эозинофильные грану­лемы создавали впечатление дегенерированной саркоцисты, но внутри гранулемы фрагменты саркоцисты найти не удалось.

У внешне здоровых коров при послеубойном гистологическом иссле­довании в миокарде наряду с тонкостенными саркоцистами S. bovica­nis выявлены очаговые инфильтраты из одноядерных клеток, распо­ложенные между волокнами мышц, иногда периваскулярно. Пролиферат состоит в основном из макрофагов, лимфоцитов, иногда встреча­ются эозинофилы и нейтрофилы. Вокруг дегенерированных цист име­ется воспалительная реакция, диффузный из одноядерных лейкоцитов инфильтрат.

Таким образом, при гистологическом исследовании животных, по­раженных саркоцистозом в естественных условиях, выявлены пато­морфологические изменения в виде лейкоцитарного миозита (возмо­жен и эозинофильный), миокардита, энцефаломиелита. Общее состояние животных зависит от интенсивности саркоцистозной инвазии скелетных мышц, сердца, мозга. При слабой инвазии животные переносят саркоцистоносительство бессимптомно — саркоцисты и патоморфологические изменения обнаруживаются только при послеубойном гистологическом исследо­вании; при сильной инвазии — развивается клиника, характеризую­щаяся такими признаками, как сердечная недостаточность, слабость мышц, неврологические нарушения.

Р. Дженсен, Д. Маккей (1977), обсуждая вероятность связи между саркоцистозом и эозинофильным миозитом, определяют последний как подострое или хроническое бессимптомное заболевание, для которого характерно возникновение воспалительных очагов в скелетных мыш­цах и в миокарде. Иногда миокард поражается эозинофильным мио­зитом до такой степени, что возникает сердечная недостаточность, а обширный процесс в скелетных мышцах вызывает слабость и наруше­ние их функций. В мазках крови при этом не обнаруживают постоян­ной эозинофилии или какого-либо другого диагностически ценного отклонения. По характеру морфологических изменений авторы выде­ляют две формы эозинофильного миозита: 1) эозинофильный миозит, при котором большое число эозинофилов скапливается в тканях с раз­рушенной мышечной соединительной тканью; 2) саркоспоридиозный миозит, который характеризуется наличием эозинофилов и гранулем. В большинстве случаев эозинофильный миозит выявляется при послеубойной ветсанэкспертизе туш крупного рогатого скота или при вскрытии животных, павших от различных заболеваний. Поражения локализуются в сердце, языке, ножках диафрагмы и же­вательных мышцах. Отдельные очаги имеют круглую или овальную форму диаметром до 1 мм. Иногда поражения проявляются в виде прожилок между мышечными волокнами. По цвету они желтовато-серые с зеленоватым оттенком. Очаги могут быть одиночными или мно­жественными, с обширным распространением. Гистологическая карти­на зависит от стадии развития болезни. В свежих очагах пораженные мышечные волокна окружены большим количеством эозинофилов. В старых очагах наряду с эозинофилами обнаруживаются лимфоциты, одноядерные макрофаги, иногда фибробласты. Многие мышечные клетки постепенно заменяются соединительной тканью или экссудатом. Часто обнаруживаемые гранулемы, окруженные зоной эпителиоидных клеток, состоят из массы остатков гиалинизированных мышечных кле­ток и лейкоцитов; иногда они обызвествляются. В периферической части гранулем наблюдаются фибробласты, лимфоциты и эозинофилы. Саркоцисты вида S. fusiformis распространены хаотично как в здоро­вых, так и в пораженных тканях и мышцах. В старых и заживших по­ражениях эозинофилы заменены фибробластами, умеренным количе­ством лимфоцитов и одноядерных макрофагов.

При хронической форме саркоцистоза чаще встречаются лейкоцитарный миозит (возможен и эозинофильный), миокардит, энцефаломиелит.

1.8.  ДИАГНОСТИКА

1.8.1. Серологическая диагностика саркоцистоза.

Иммунологические методы применяются с целью подтверждения диагноза при вспышках острого саркоцистозного заболевания в есте­ственных условиях, а также при экспериментальном заражении живот­ных. Основная цель опытов заключалась в выявлении значения титров к саркоцистозным антигенам, по которым можно было бы с уверен­ностью судить о заражении животных. Однако широкое использование серологических методов диагностики саркоцистоза in vivo сдержива­ется трудностями получения активного саркоцистозного антигена.

Для получения саркоцистозного антигена используется разработанный в 1980—1982 гг. метод культивирования содержимого саркоцист на искусственной полусинте­тической питательной среде.

Предложенный метод изготовления саркоцистозного антигена заключается в следующем: жидкость, полученную после механическо­го измельчения и обработки раствором Hanks'a скелетных мышц, инва-зированных саркоцистами, высевают в объеме 0,2—0,5 мл на полу­синтетическую питательную среду и выдерживают в термостате 48— 72 ч при t = 37—38°С. Выросшие колонии клонируют 3—4 раза. Иден­тифицированные под световым микроскопом клетки смывают 1% раст­вором формалина и выдерживают 12—15 ч при t = C. Затем куль­туру очищают 5—6-кратным промыванием стерильным физиологичес­ким раствором и центрифугируют 5 мин при 1,5 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость удаляют. Осадок в качестве антигена хранят при 1 = 3—4°С не более 7—10 суток.

Для проверки специфичности полученного антигена ставят реак­цию агглютинации (РА) с сывороткой крови животных-носителей сар­коцист.

В настоящее время большое значение придается сравнению резуль­татов серодиагностики и гистологических исследований. Самым высо­ким титрам серологических реакций обычно соответствуют шизогональная стадия развития паразита и стадия незрелых саркоцист, про­являющиеся в клинике острого саркоцистоза. Однако особенный интерес представляют исследования по выявлению значений титров антител при хронической форме саркоцистоза, которая развивается в случае заражения животных малой дозой инфекци­онного начала (спороцист), что ведет к образованию незначительного количества меронтов и саркоцист и способствует субклиническому те­чению заболевания.

Серологические исследования с целью прижизненного выявления саркоцистоза у крупного рогатого скота проводили с исполь­зованием саркоцистозного антигена, приготовленного из вегетативных стадий саркоцист, выращенных в культуре на полусинтетической пи­тательной среде.

Для определения интенсивности образования антител в ответ на искусственное инфицирование травоядных животных, а также на их заражение в естественных условиях возбудителем саркоцистоза ис­пользовали различные иммунологические методы.

Реакция связывания комплемента (РСК)- применяют РСК для выявления антител.

Реакция гемагглютинации антиглобулином непрямая Кумбса (РГААН)- опреде­ляют неспецифические агглютинины и гемолизины у телят, заражен­ных спороцистами S. bovicanis.

Кровь собирали в вакуумные пробирки и замораживали. Хранили при t= —75°С. Для проведения РГААН использовали кроличий anti-bovine-глобулин, инактивированный нагреванием до t = 56°C в течение 30 мин и адсорбированный на эритроцитах здорового теленка, промы­тых физиологическим раствором. Две капли 2% суспензии эритроци­тов здорового теленка смешивали с двумя каплями испытуемой сы­воротки, выдерживали при t = 37°C в течение 15 мин, трижды про­мывали физиологическим раствором, ресуспендировали в 2% физио­логическом растворе, смешивали с двумя каплями кроличьего anti-bovine-глобулии. Затем инкубировали в течение 30 мин при t = C и проводили макро- и микроскопические исследования реакций агглютинации и гемолизиса. Все пробы сыворотки, взятой у зараженных спо­роцистами  S. bovicanis телят,  имели отрицательные титры  РГААН.

Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА)- получали растворимый антиген из зоитов саркоцист, выде­ленных из миокарда теленка, зараженного орально 100 тыс. споро­цист S.fusiformis. В колбы объемом 250 мл помещали 30—40 г из­мельченных содержащих саркоцисты тканей сердца, добавляли 100 мл HCl-пепсин переваривающей жидкости (2,5 г пепсина в пропорции 1:10 000, 10 мл НСl, воды до 1 л) и взбалтывали на магнитной ме­шалке 5—10 мин при t = 37°C. Супернатант декантировали в 2 цент­рифужные пробирки объемом 50 мл и центрифугировали 5 мин при 500g. Осадок ресуспендировали в растворе Hanksa (рН 7,4; t = 5— 10°С). Суспензию центрифугировали 5 мин при 500g. Белый осадок объемом 0,3 мл, состоящий из уплотненных зоитов S. fusiformis, ре­суспендировали в растворе Hanksa, центрифугировали при 500g, су­пернатант выбрасывали, осадок ресуспендировали в 3 мл физиологи­ческого раствора, затем замораживали при t=-20°С. Позже зоиты размораживали, центрифугировали 30 мин при 10000g. Супернатант содержал растворимый антиген (8 мг белка на 1 мл). Для использо­вания в РНГА антиген разбавляли до концентрации 30 мкг протеина на 1 мл солевого фосфатного буфера (PBS) при рН 6,4.

У зараженных спороцистами S.fusiformis телят титры РИГА повышались на 35—40-й день после инфицирования, достигая значения 1:39000 на 90-й день. У мо­лочных коров титры РИГА изменялись в пределах от 1:486 до 1:540. Титры РИГА 1:54—1:486 могут служить индика­торами субклинического саркоцистоза, титры РИГА от 1:1458 и вы­ше указывают на острый саркоцистоз.

Реакция непрямой иммунофлуоресценции (РИФН). Посредством РИФН выявляли циркули­рующие антитела у телят, орально инфицированных 250000 спороцист от собак. Титры РИФН изменялись от 1:40 до 1:640 в зависимости от времени, прошедшего после заражения.

Реакция энзиматических антител (РЭМА) (ELISA). Первоначаль­но РЭМА применяли для серодиагностики токсоплазмоза у человека и животных. Позже при­способили РЭМА для определения циркулирующих антител к проли­феративным стадиям возбудителя саркоцистоза в сыворотках челове­ка и крупного рогатого скота.

При помощи РЭМА установили, что кросс-реакция между антигеном, полученным из цис­тозоитов саркоцист, и антигеном, полученным из эндозоитов Toxo­plasma gondii, отсутствует. В качестве антигенов ипсользовали водный экстракт саркоцист S.сегпае от мышей (Microtus arvalis) и растворимый токсоплазмозный антиген. Трех морских свинок у которых антитела к пролиферативным стадиям возбудителей сар­коцистоза и токсоплазмоза методом РИФН не выявлялись, иммунизи­ровали против S.сегпае или S.cruzi путем внутримышечной инъек­ции 0,5мг лиофилизированного саркоцистозного антигена. Через 13 дней этим же морским свинкам ввели усиливающую иммунизацию дозу в 0,25 мг антигена. Сыворотки, полученные от иммунизированных таким образом морских свинок, имели положительные титры РЭМА, равные 1:5120, 1:1280 и 1:1280 соответственно. Титры на антиген Toxoplasma gondii были отрицательными.

Таким образом, для подтверждения диагноза острого саркоцистоза у крупного рогатого скота при вспышках заболевания в естественных условиях, а также при искусственном заражении те­лят спороцистами S.bovicanis использовали реакцию непрямой гемаг­глютинации (РНГА), реакцию связывания комплемента (РСК), реак­цию энзиматических антител (РЭМА), реакцию непрямой иммуно­флуоресценции (РИФН). В основном серологические реакции приме­нялись для выявления антител при искусственном заражении проме­жуточных животных спороцистами различных видов Sarcocystis. Глав­ная цель проведенных опытов заключалась   в определении значения титров к антигенам пролиферативных стадий возбудителя саркоцисто-за, по которым можно было бы с уверенностью судить о заражении животных.

При сравнении результатов серодиагностики и гистологических исследований установлено, что самым высоким титрам серологических реакций соответствуют шизогональяая стадия развития паразита и стадия незрелых саркоцист, проявляющиеся в клинике острого сарко­цистоза.

1.8.2. Биохимические и физикохимические

 показатели саркоцистозного мяса.

Саркоцистозное мясо характеризуется низкими органолептическими показателями. Так, суммарное количество аминокислот, свидетельст­вующее о скорости разложения свинины, увеличивается в зависимости от степени инвазированности (А. А. Богуш, 1974). В белках сарко­цистозного мяса увеличивается количество пролина, как следствие нарушения процессов дезаминирования изменяются соотношения не­которых заменимых и незаменимых аминокислот (А. А. Богуш, В. С. Литвяк, Н. А. Урбанович): уровни содержания лецитина, фенилаланина, гистидина, лизина, валина, аргинина увеличиваются в 2,5—4 раза, аланина, метионина, триптофана уменьшаются в 1 5 раза.

В мясе саркоцистозных животных возрастает содержание свобод­ной воды, снижается количество внутриклеточного жира, протеина и золы, повышается активность протеолитических ферментов. Уменьша­ется количество фосфора, цинка, йода (А. Г. Какурина, 1976).

Согласно А. А. Богушу (1976), особенно резко ухудшается ка­чество мяса от зараженных саркоцистами животных при хранении: после 48-часового выдерживания при комнатной температуре такое мясо оказывается непригодным в пищу, тогда как от незараженных животных становится сомнительным по свежести.

По данным Я.Сентукайте, В.Юкнис, биологическая цен­ность говядины, пораженной саркоцистами, значительно снижается. Содержание глюкозы уменьшается по сравнению с контролем на 32,8%, гликогена — на 38,6, белка — на 24,5%.

Содержание гликогена. Процессы распада гликогена, накопления молочной кислоты и снижения рН в основном заканчиваются через 24 ч хране­ния мяса при t = C.

Проводилось изучение динамики созревания мяса с определением содер­жания гликогена в мышцах крупного рогатого скота через 2, 6, 12, 24 и 48 ч после убоя. Накопление гликогена в мышцах животного нахо­дилось в обратной зависимости от степени поражения саркоцистами. С усилением саркоцистозной инвазии количество мышеч­ного гликогена уменьшалось до 273± 15,80 мг%.

В процессе хранения содержание гликогена наиболее интенсивно снижалось в мясе от здоровых животных и от животных, незначитель­но инвазированных саркоцистами. Через 48 ч содержание гликогена в мясе сильно инвазированных животных уменьшалось только на 164±9,84 мг%, в то время как в мясе здоровых животных — на 404±8,24 мг%.

При высокой интенсивности саркоцистозной инвазии в мышечной ткани отмечается гипогликемия. В процессе хранения в таком мясе содержание гликогена уменьшается менее интенсивно, чем в мясе от здоровых животных. В связи с этим отрицательное влияние заселения саркоцистами мышечной ткани на процесс послеубойного гликолиза не исключается.

Содержание молочной кислоты. Нарастание гипогликемии с уве­личением степени саркоцистозной инвазии, а также уменьшение содер­жания мышечного гликогена в процессе хранения мяса от пораженных животных оказывает определенное влияние на накопление в мясе молочной кислоты. Меньшее ко­личество молочной кислоты в мышцах определяется при сильной сте­пени саркоцистозной инвазии. Накопление молочной кислоты в процес­се хранения мяса, в различной степени инвазированного саркоциста­ми, проходит менее интенсивно, чем в мясе от здоровых животных.

Количество молочной кислоты в мышцах увеличивается одновременно с уменьшением содержания гли­когена в процессе хранения мяса. На значение обоих показателей, безусловно, влияет интенсивность саркоцистозной инвазии. Наиболь­шее количество молочной кислоты вне зависимости от степени заселе­ния туш саркоцистами отмечается на вторые сутки хранения мяса при t=l—3°С.

Величина рН и пероксидазная проба. Согласно И. А. Смородинцеву (1939), В. И. Соловьеву (1965), величина рН и показатели перок-сидазной пробы связаны с накоплением молочной кислоты в мышцах. Учитывая это, рН и пероксидазную актив­ность определяли через 48 ч после убоя животных и хранения мяса при t=l—3°С. При сильной степени саркоцистозной инвазии величина рН мяса со­ставляла 6,5—6,8, пероксидазная проба была отрицательной. При средней степени саркоцистозной инвазии рН и пероксидазная актив­ность изменялись меньше, а при слабой инвазии были такими же, как и в мышцах здоровых животных.

Следовательно, поражение мышц саркоцистами ведет к уменьше­нию содержания в них гликогена и молочной кислоты.

Также к физико-химических показателей качества говядины при саркоцисто­зе  относятся показатели, характе­ризующие качество говядины: содержание воды (сво­бодной и связанной), влагоудерживающая способность, количество внутримышечного жира, соотношение триптофана и оксипролина, неж­ность мяса.

При сильной и средней интенсивности саркоцистозной инвазии в говядине содержится меньше связанной воды и внутримышечного жи­ра, свободной воды и оксипролина — больше, чем в мясе здоровых животных.

Уменьшение содержания внутри­мышечного жира и незаменимых аминокислот, увеличение доли соеди­нительной ткани у пораженных саркоцистозом животных отрицатель­но влияет на выход и питательность мяса.

Одним из наиболее достоверных показателей качества мяса явля­ется количество воды, связанной с белками мышц. Эта форма воды оказывает существенное влияние на нежность мышц, которую принято измерять в см2/г азота. При сильной степени саркоцистозной инвазии нежность мяса достигала 248,3, при средней — 267,2, при сла­бой — 285, у здоровых животных — 297 см2/г азота. Следо­вательно, при высокой интенсивности саркоцистозной инвазии неж­ность мяса снижалась на 48,7 см2/г азота по сравнению с неж­ностью мяса здоровых животных.

В результате специальных исследований установлено, что мясо, сильно инвазированное саркоцистами, после 36—48 ч хранения при t=17—18°С значительно теряет упругость мышечных волокон, стано­вится на разрезе матового цвета, липким, некоторые пробы обнаружи­вают гнилостный запах, сухожилия приобретают сероватый цвет, по­крываются слизью; бульон из такого мяса мутный. Бактериоскопия выявляет в мясе микроорганизмы палочковидной формы. В световой микроскоп нередко видны распавшиеся мышечные волокна. Мясная вытяжка мутная, величина рН 6,6—6,9, пероксидазная проба отрица­тельная. Аминоаммиачного азота содержится 108,0 мг%. При добавлении к бульону или мясной вытяжке 5% водного раствора мед­ного купороса образуются хлопья, иногда — желе сине-голубого или зеленого цвета. При средней степени поражения скелетных мышц сар­коцистами такие изменения отмечались после 56,0+8,0 ч, а при слабой инвазии в мясе здоровых животных — после 72,0+12,0 ч хранения.

Таким образом, быстрая порча мяса, пораженного саркоцистами, по-видимому, обусловливается повышением содержания в нем воды, снижением количества гликогена и активности гликолитических фер­ментов, а следовательно, и гидролиза гликогена до молочной и других кислот. В конечном итоге это способствует ускоренному развитию в мясе, пораженном саркоцистами, патогенной микрофлоры.

1.8.3. Бактериологического исследования.

В результате поражения саркоцистозом и ослабления за­щитных функций в организме крупного рогатого скота возникают ус­ловия для интенсивного обсеменения печени, лимфатических узлов и скелетных мышц такими бактериями, как CL.perfringens, сальмонелла­ми, кишечной палочкой, стафилококками. При этом обсемененность этих органов CL.perfringens, кишечной палочкой, коагулазоположи-тельными стафилококками находится в прямой зависимости от инва-зирования туш саркоцистами. Штаммы СL.perfringens, образующие теплоустойчивые споры, и серотипы кишечной палочки 026, 056, 078 и другие, потенциально опасные для человека и молодняка животных, высеваются из мышц, лимфатических узлов и печени туш, сильно и средне инвазированных саркоцистами. Поэтому необходимо проводить микробиологическое исследование саркоцистозного мяса.

Идентификация Clostridium perfringens. Пробы кусочков мышц, пе­чени, лимфатических узлов отбирали через 1,5—2 ч после убоя живот­ных, растирали их в ступках с 10-кратным количеством стерильной воды. Первичный посев производили на сульфитполимиксиннеомициновую среду и инкубирован 24—36 ч при t = 37°C, затем пересева­ли на среду Кейслера с последующим выращиванием на протяжении 18—24 ч при такой же температуре в анаэростатах. Колонии, морфо­логически сходные с CI. perfringens, пересевали на среду Китт-Тароцци с 0,5% раствором глюкозы. Инкубировали 18—24 ч при t = 37°C и проверяли на чистоту путем микроскопического исследования мазков и посевов на среду Гисса. Принадлежность выделенных микробов к CI. perfringens определяли на основании морфологических, культурально-биохимических и токсигенных свойств.

Вёвиду длительности, громоздкости и относительно недостаточной эффективности указанных средств применяли также среду ГАН-3 в про­писи И. С. Загаевского (1970). Для приготовления среды ГАН-3 в 1 л стерильного обезжиренного молока растворяли 100 г желатина, 20 г глюкозы, 5 г натриевой селитры, добавляли 10 мл 10% водного раствора хлористого железа. Смесь дважды подогревали (через день) текучим паром. При рН 7,3—7,4 добавляли 500 тыс. ЕД полимиксина. Затем среду разливали по 5 мл в стерильные пробирки. Посевы де­лали уколом пастеровской пипетки в застывший столбик среды, по­верхность которого после посева покрывали слоем парафина толщи­ной в 1 — 1,5 см. Инкубировали при t = 38°C. При наличии Сl.perfrin­gens через 8—12 ч от момента посева происходило разжижение же­латина с образованием черного губчатого сгустка казеина. Вследствие бурного газообразования выталкивались парафиновые пробки. Отме­чалась положительная реакция на нитрит с реактивом Гисса. Резуль­таты высевов на средах ГАН-3, Кит-Тароцци соответствовали в 95,8,± + 1,2% случаев.

Идентификация сальмонелл и кишечной палочки. Пробы вытяжек из лимфатических узлов и мышц наносили на стерильные полоски фильтровальной бумаги размером 100x25 мм, которые затем поме­щали в стерильные пробирки, подсушивали в термостате 3—4 ч при t = 37°C и хранили в бытовом холодильнике в течение 2—5 недель. С целью идентификации сальмонелл и кишечной палочки в пробирки наливали по 10 мл 1% раствора глюкозы (рН 7,3—7,4), инкубировали 3—4 ч при t = 37°C, затем образцы содержимого пробирок высевали на среду Эндо, в которую для усиления эффективности добавляли 0,05% резорцина.

Результаты исследования 302 проб печени, лимфатических узлов и мышц, взятых через 1,5—2 ч после убоя животных и хранившихся в течение 2 мес, и проб вытяжек из этих органов, впитанных на полос­ках фильтровальной бумаги, совпали в 97,0±2,0% случаев.

Для выделения сальмонелл и кишечной палочки из лимфатических узлов и мышц применяли также методику парафиновых блоков, раз­работанную И. С. Загаевским (1967). Лимфатиечские узлы и пробы мышц весом 50—70 г обжигали на грелке, помещали в стерильные фарфоровые чашки и заливали расплавленным парафином, предва­рительно нагретым до 170—200°С, затем остуженным до 50—52°С. Пробы в парафиновых блоках выдерживали   в   термостате 12 ч   при t = 47°C. После этого их вскрывали, -разрезая на две части, и жидкостью, выделенной в местах разрезов, увлажняли среду Эндо в чашках Петри, затем инкубировали ее 18—24 ч при t = 37°C.

На среде Эндо бактерии группы кишечной палочки Е. coli в боль­шинстве случаев образуют красные колонии со светло-розовым обод­ком, а в 10% случаев — темно-красные колонии с металлическим блес­ком. При дифференциации Е. coli от A. aerogenes, формирующей на среде Эндо розовые или бесцветные колонии, напоминающие колонии сальмонелл, учитывали, что Е. coli подвижна, не разжижает желатин, образует индол, не ферментирует сахарозу и соль лимонной кисло­ты, не образует ацетилметилкарбинол; в то время как A. aerogenes— палочка неподвижная, образует ацетилметилкарбинол, ферментирует сахарозу, не образует индол, усваивает соль лимонной кислоты.

Пробирочную реакцию агглютинации ставт при разведении сыво­роток от 1:100 до титра. Пробирки со взвесью живой культуры и раз­веденными сыворотками выдерживали 2 ч при t = 37°C, затем сушили при комнатной температуре. Пробирки с подогретой культурой поме­щали в термостат на 20 ч при t = 37°C, после чего производили учет. Положительной реакцией считали крупнохлопчатую агглютинацию с живой культурой в разведении 1:200—1:1 400 и мелкозернистую аг­глютинацию с подогретой  культурой  в разведении  1:800—1:1 600.

Идентификация стафилококков. Посев исследуемого материала производили в чашках Петри на МПА, содержащем 2% NaCl, 2% глюкозы и 10% свежей дефибринированной крови крупного рогатого скота. Кроме того, из расчета на 1 мл среды добавляли 300 тыс. ЕД полимиксина и 0,25 мг сорбината натрия; рН среды 7,4. Образцы мышц и органов растирали стеклянными палочками с рези­новыми наконечниками в пробирках со стерильным физиологическим раствором. Инкубировали 24—48 ч при t = 37°C, после чего изучали морфологические, культуральные и биологические свойства стафило­кокков.

Реакции плазмокоагуляции и гемолиза. Для реакции плазмокоагуляции свежеполученную кровь кролика разводили в колбе со сте­рильным раствором лимоннокислого натрия в соотношении 1:5, тща­тельно перемешивали со стеклянными бусами, затем плазму центрифугировали, разводили физиологическим раствором в соотношении 1:4, разливали в стерильные пробирки по 1 мл и добавляли по 2 кап­ли суточной агаровой культуры стафилококков. Пробирки выдержи­вали в течение суток в термостате при t = 37°C, просматривая их через 2, 6, 12 и 24 ч. При просмотре учитывали и полную коагуляцию плазмы, и образование небольших сгустков. Положительными оказа­лись 92 стафилококковые культуры, отрицательными — 28, коагу­лировали плазму в течение 2—6 ч — 22, 7—12 ч — 25, 13—24 ч — 17 культур. Стафилококки, коагулирующие плазму в течение 2—6 ч, вы­делялись из печени, лимфатических узлов и мышц при сильном и сред­нем инвазировании туш саркоцистами. Стафилококки, выделенные из мышц при слабом инвазировании саркоцистами, а также от здоровых животных, коагулировали плазму в течение 16—24 ч.

Учитывая, что одним из характерных свойств патогенных стафило­кокков является продуцирование гемолизина в полуанаэробных усло­виях, также используют реакцию гемолиза. Ее постановку про­водят на среде П-4, предложенной И. С. Загаевским (1970). Для этого в 500 мл мясного бульона растворяли 10 г хлористого натрия, 30 г пи­тательного агара (в порошке), 0,8 г углекислого натрия. Смесь дваж­ды прогревали (через день) 30 мин текучим паром при t = 100°C, за­тем добавляли 10 г глюкозы, 5 г маннита, 0,25 г сорбината натрия и кипятили 5 мин. Устанавливали рН 7,3—7,4 и перед разливом в чашки Петри добавляли при t = 47—48°С 10% свежей дефибринированной кро­ви крупного рогатого скота.

Поверхность остывшего агара увлажняли свежими разрезами пе­чени, мышц или лимфатических узлов туши. Затем разливали среду, охлажденную до 45—47°С, выдерживали 24—48 ч при t= +37°С. При наличии патогенных стафилококков в толще среды вокруг колоний микробов образуется зона гемолиза. Сапрофитные стафилококки в этих условиях обычно не развиваются. Совпадение результатов реак­ции гемолиза, проведенной на среде И. С. Загаевского, и коагулазной пробы отмечалось в 98+2% случаев.

1.8.4.  Методы выявления саркоцист.

1.8.4.1. Компрессионный метод.

Для обнаружения   микросаркоцист у всех видов   животных   берут пробы мышц различных   органов    (сердца, пищевода, диафрагмы,     скелетных мышц и др.). Из каждой   пробы по ходу мышечных волокон изогнутыми ножницами готовят по 4 среза величи­ной с овсяное зерно (И. И. Вершинин, 1982). Срезы сдавливают стеклами компрессориума и исследуют при ма­лом увеличении под световым микро­скопом. Для лучшего выявления сар­коцист предложен ряд способов окра­шивания срезов из мышц. С. А. Лубянецкий окрашивал срезы мышц раст­вором краски Гимза (1—2 капли   на 1 мл дистиллированной воды) или метиленовой синью в разведении 1:1000 в течение 60 минут  с  последующим обесцвечиванием окрашенных срезов нашатырным спиртом и промыванием водой. Г. В. Кононенко (1968) моди-фицировал метод окраски срезов по С. А. Лубянецкому: к 30 мл 10% рас­твора метиленовой сини он добавлял 30 мл 0,01% раствора КОН, а полу­ченную смесь разбавлял дистиллиро­ванной водой в соотношении 1:1, ок­рашивал срезы в течение 10 минут и обесцвечивал их раствором аммиака. А. Г. Какурина (1976, 1978) на мы­шечные срезы, сдавленные в компрес-сориуме, предложила наносить на 5—10 минут по 2—3 капли смеси, приго­товленной из равных частей 0,5% вод­ного раствора метиленовой сини и ле­дяной уксусной кислоты (85%). Затем спезы обесцвечивают 2—3 каплями 20—25% раствора нашатырного спир­та, промывают дистиллированной водой и просматривают при малом уве­личении: на голубом фоне мышечной ткани саркоцисты выглядят темно-си­ними.

Kozar (1971) рекомендует окраши­вать срезы раствором генциан-виолета в пропорции 1 : 5000 в течение 5 ми­нут, 2—3 раза обесцвечивать по 5— 10 минут 1.5—2% уксусной кислотой, промывать дистиллированной водой, затем раздавливать в компрессориуме и просматривать под микроскопом.

Согласно модификации В. И. Голубкова, к 98 мл 2,5% раствора метиленовой сини добавляют 2 мл 0,1н азотной кислоты и 1—2 капли этой смеси наносят на срез, вы­держивают 3—4 минуты, промывают дистиллированной водой, затем зажи­мают стеклами компрессориума и просматривают при малом увеличении под световым микроскопом. Автор рекомендует этот метод окраски как наиболее эффективный при исследо­вании дефростированного мяса.

1.8.4.2. Гистологический метод.

Метод состоит из пяти этапов и более: I) фиксация; 2) консервирование; 3) приготовление гистологических сре­зов; 4) окрашивание и промывание срезов; 5) микроскопирование.

Пробы тканей различных ор­ганов крупного рогатого скота, пора­женного S. cruzi, фиксируются или в 10% забуференном формалине, или в жидкости Bouin, или в фиксаторе Helly. Часть проб после фиксации заливают парафином, затем готовят сре­зы толщиной 5 мкм, другую часть за­ливают метакрилатом и готовят срезы толщиной 3 мкм. Срезы окрашивают или гематоксилином-эозином, или ге­матоксилином, или парааминосалициловой кислотой.

Для окраски срезов, фикси­рованных гликольметакрилатом, используют метод McManus для окра­шивания гликогена; срезы обрабаты­вают 1% ПАСК в течение 10 минут, промывают дистиллированной водой в течение 5 минут, опять окрашивают ПАСК в течение 20 минут, промыва­ют водопроводной водой 10 минут, за­тем в течение 30 минут окрашивают Gil-III-гематоксилином, подсинивают по Scott, промывают водопроводной водой в течение 2 минут. Пластиче­ские срезы (залитые парафином) промывают дистиллированной водой, дегитратируют 95%, затем 100% эта­нолом, очищенным ксилолом и гото­вят препараты в синтетической среде.

Фиксация проб тканей, поражен­ных саркоцистами, 10% забуференным формалином широко используется. В качестве фиксатора применяли также 2% забуференный глутаральдегид, раствор Bouin или фиксатор Helly.

Из консервированных парафином или гликольметакрилатом проб гото­вили срезы толщиной 3—7 мкм и ок­рашивали их гематоксилином-эозином, ПАСК, ализаровым красным, краска­ми von Koss, Nocht, Giemsa, ферроциа-нидом, по Wilderl, Gram, метиленовой синью, гематоксилином Heidenhain и другими красителями.

1.8.5. Извлечение саркоцист в физиологическом растворе.

Метод предложен Erber (1977). Про­бы мышц (10 г) разрезают на кусоч­ки длиной 3 мм, помещают в колбу Эрленмейера с 50 мл физиологическо­го раствора, добавляют стеклянные бусинки диаметром 4 мм, взбалтыва­ют, затем суспензию пропускают че­рез сито с диаметром отверстий 600— 700 мкм, центрифугируют. Осадок на­носят на предметное стекло и препа­рат просматривают под световым мик­роскопом.

Jungmann и Knoch (1980) модифи­цировали метод Erber (1977): при об­наружении саркоцист компрессорным методом, предварительно добавив каплю физиологического раствора, срезы переносят пинцетом в центри­фужную пробирку,   затем добавляют 10-кратный объем (к объему мышеч­ного среза) физиологического раство­ра, 10 стеклянных бусинок диаметром 4 мм, закрывают пробирку резиновой пробкой и встряхивают вручную 5— 8 минут. Удалив предварительно стек­лянные бусинки проволочной петлей, центрифугируют 4—5 минут при 2000 об/мин, декантируют и весь оса­док наносят на предметное стекло и микроскопируют при 160х и 640х уве­личении.

Метод извлечения саркоцист по Erber (1977) и гистологический метод используют для дифференциации сар­коцист различных видов рода Sarco­cystis у одного и того же промежу­точного хозяина.

1.8.6. Методы обнаружения мерозоитов.

1.8.6.1. Метод Козелкина (1928).

С поверхности свежих срезов мышц лезвием бритвы или скальпелем дела­ют соскоб и наносят его на обезжи­ренное предметное стекло в виде маз­ка или делают мазок-отпечаток, под­сушивают метиленовым или этиловым спиртом или спирт-эфирной смесью и окрашивают по Романовскому-Гимза в течение 20 минут. При иммерсион­ной системе микроскопа в мерозоитах хорошо вилны светлые ядра с ярко-красными глыбками хроматина. Пе­редняя часть мерозоита окрашивается в розовый, а задняя — в голубой цвет.

1.8.6.2. Метод Kozar (1971).

Применяется для выявления мерозои­тов из микросаркоцист. Навеску 2— 5 г исследуемой мышечной ткани пе­реносят в ступку, добавляют 0,5— 2,0 мл физиологического раствора и тщательно растирают пестиком. Для исследования каплю полученной кро­вянистой жидкости помещают на пред­метное стекло, накрывают покровным стеклом и исследуют при среднем уве­личении и слегка закрытой диафрагме.

1.8.6.3. Метод переваривания мышц в желудочном соке.

П. А. Владимирова (1971) предло­жила ускоренный метод переварива­ния фарша с целью обнаружения Pro­tozoa: навеску фарша (10 г) помеща­ют в плоскодонную колбу, заливают 25-кратным количеством искусствен­ного желудочного сока, составленного по прописи: 3 г пепсина, 1 г концен­трированной соляной кислоты и 100 луг воды. Колбу помешают в термостат при 42—47°С на 4—5 часов, после че­го содержимое колбы переносят в ча­шки Петри и просматривают их под микроскопом.

О. В. Рыбалтовский (1971), ис­пользуя основной принцип метода П. А. Владимировой, модифицировал его для выявления трофозоитов сарко­цист в мышечной ткани.

Навеску (2—3 г) исследуемой мышцы тщательно измельчают, поме­щают в плоскодонную колбу и зали­вают 10-кратным объемом искусствен­ного желудочного сока (в прописи П. А. Владимировой). Колбу помеща­ют в термостат при 38—40° С на 1 час. Затем содержимое колбы филь­труют через мелкое ситечко в центри­фужные пробирки. Центрифугируют при 1500—2000 об/мин в течение 2— 3 минут. Из осадка со дна пробирки пастеровской пипеткой берут 2—3 кап­ли, наносят их на обезжиренные пред­метные стекла, делают мазки, высу­шивают и фиксируют спиртом. Кра­сят по Романовскому-Гимза в течение не больше 10 минут, так как трофозоиты саркоцист очень быстро воспри­нимают краску после пребывания в искусственном желудочном соке. Маз­ки исследуют под иммерсией.

Посредством метода переваривания мышц в желудочном соке, кроме эндозоитов, выявляются также целые микросаркоцисты (3. И. Кислякова, О. В. Рыбалтовский, 1980).

1.8.6.4. Метод переваривания мышц трипсином.

Эффективным методом выделения трофозоиты (брадизоиты, мерозоиты, эндозоиты и др.) счи­тается метод ферментативного перева­ривания мышечных тканей трипсином, предложенный Erber (1977). Навеску мышечной ткани (10 г) измельчают до кусочков величиной 3 мм, помеща­ют в колбу Эрленмейера на 250 мл и добавляют 50 мл раствора трипсина и при постоянном перемешивании с ис­пользованием магнитной мешалки вы­держивают при 20—23° С в течение 30 минут. Суспензию пропускают че­рез сито с диаметром отверстий 600— 700 мкм, центрифугируют, осадок на­носят на предметное стекло и просма­тривают при 500-кратном увеличении.

Prestwood (1980) после грубого измельчения исследуемых мышц (20 г) помещают навеску в кол­бу и заливают ее 10-кратным объемом переваривающего раствора (10 г пеп­сина, 1660 мл   водопроводной   воды, 13,3 мл концентрированной соляной кислоты). Пробы выдерживают в этом растворе 2 часа в термостате при 37°С. К концу переваривания содер­жимое колбы фильтруют, выделяя осадок. Осадок суспендируют в 15 мл воды, центрифугируют при 1000 об/мин в течение 10 минут, затем декантиру­ют, переносят на предметное стекло и исследуют при 200—400-кратном уве­личении.
1.8.6.5. Гомогенатный метод.

Erber (1977) выделял цистозоиты из саркоцист путем измельчения мышц (50 г) при помощи ножевого гомоге­низатора с добавлением равного объ­ема физиологического раствора. Из полученной суспензии готовят мазки, окрашивают по Гимза и исследуют под микроскопом при 500-кратном увеличении.

Hinaidy (1980) модифицировал го­могенатный метод следующим обра­зом: 20 г грубо измельченной мышеч­ной ткани, очищенной от жира и слизистых оболочек, помещают в миксер, добавляют 80 мл физиологического раствора и гомогенизируют в течение 30 секунд. Суспензию дважды пропу­скают через сито с диаметром отвер­стий 1,5 и 1 мм и центрифугируют в течение 2 минут. Осадок переносят на предметное стекло, накрывают по­кровным стеклом и исследуют при помощи стереомикроскопа при 25— 50-кратном увеличении.

1.8.6.6. Метод выдавливания мясного сока.

Согласно описанию А. А. Богуша (1976), навеску мяса (5 г) измельча­ют и растирают в ступке с добавлени­ем 0,5—2,0 мл физиологического раст­вора. Пестиком раздвигают остатки мышц по краям ступки, а суспензию по каплям наносят с помощью пипет­ки на предметные стекла. Мазки мож­но фиксировать и окрашивать по Ро­мановскому-Гимза. В этом случае пре­парат исследуют под иммерсией.

1.9. ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА МЯСА, ИНВАЗИРОВАННОГО САРКОЦИСТАМИ

Основной вопрос заключается в том, является ли инфицированное саркоци­стами мясо опасным для здоровья че­ловека или нет? У людей, потребляю­щих в пищу саркоцистозное мясо, не­которые авторы не наблюдали клини­ческих признаков заболевания. Однако в опытах, проведенных Hey­dorn (1977), Piekarski (1978), у людей, употребивших сырое свиное и говяжье мясо, зараженное саркоци­стами, отмечались понос, тошнота, оцепенение.

По сведениям Heydorn (1977), при заражении людей сырой говядиной от животных, получивших орально 420 тыс., 2 млн. и 500 тыс. спороцист S.suihominis, клинические симптомы более выраженные, чем при зараже­нии спороцистами S. bovihominis в тех же дозах. В случае S. bovihominis через 3—6 часов наблюдалось легкое головокружение, тошнота, боли в жи­воте, понос, усиленная перистальтика, а в случае S.suihominis — через 6—8 часов — сильный понос, тошнота, рво­та, боли в животе и суставах, общая слабость.

Говядина содержала много сарко­цист, однако точное количество их не указывалось. Перед дачей волон­терам зараженной саркоцистами сви­нины Heydorn проводил трихинеллоскопию препаратов-оттисков. У трех волонтеров, проглотивших сырую сви­нину, содержащую в среднем в одном препарате 3—4, 7—10 и 9 саркоцист S.suihominis, клинические признаки были той же тяжести: сильный бес­кровный понос, тошнота, исчезновение аппетита, повышение температуры, общая слабость, боль в суставах, чув­ство   онемения.    Отмечена меньшая степень пораженности свини­ны саркоцистами и большая для чело­века патогенность зараженного мяса, а также сильная пораженность говя­дины и меньшая ее патогенность. Причина заболевания людей, употре­бивших зараженное саркоцистами мя­со, по мнению Heydorn, заключается или в прямом воздействии паразитов на организм человека, или в отравле­нии саркоцистином. Говядина может быть выпущена в торговую сеть без огра­ничений, тогда как свинина должна быть подвергнута трихинеллоскопии и в случае сильного поражения — за­бракована.

Саркоспоридиоз кишечника чело­века широко изучен в Польше (Plot-kowiak, 1980). Вообще сар­коспоридиоз кишечника человека вы­является только в результате копрологического исследования. В кале человека спороцисты обнаруживаются, начиная с 9-го дня после поедания зараженного мяса и их выделение может длиться несколь­ко недель, месяцев и даже лет.

1.9.1. Качество саркоцистозного мяса.

Качество говядины в боль­шой мере зависит от тяжести хрони­ческого саркоцистоза животных. Мя­со от пораженных животных прониза­но саркоцистами (1:28 к весу туши, или 2—3 кг саркоцист на среднюю по весу говяжью тушу), в нем меньше доброкачественных мышц. Наличие зрелых саркоцист способствует разросту соединительной ткани и снижению упитанности животных (В. А. Бритов, 1970; 3. И. Кислякова, О. В. Рыбал-товский, 1980).

Гистологические исследования выявили зернистую сар­коплазму, распад мышечной ткани, прилегающей к саркоцистам, и лейко­цитарные инфильтраты. При сильном поражении (3—5 саркоцист в поле зрения микроскопа) вокруг саркоцист образуются резко выраженные инфильтраты. Наряду с исчезновением поперечной исчерченности, гомогени­зацией и зернистой дистрофией сарко­плазмы, в некоторых мышечных во­локнах процесс воспалительно-дегене­ративных изменений приводит к рас­паду волокон. Вокруг саркоцист скап­ливаются эозинофильные лейкоциты, по периферии развивается соедини­тельная ткань, откладываются соли извести в виде глыбок, которые посте­пенно увеличиваются и превращаются в известковые конкременты. При сильном заселении скелетных мышц саркоцистами Ю. К. Горбов (1981) отмечает гидремичность и дряблость мышц, серозно-студенистую инфильтрацию межмышеч­ной ткани. Многие авторы наблюдали в пораженной саркоцистами говядине серовато-зеленые очаги — эозинофиль­ные инфильтраты. В очаговых инфиль­тратах в мышцах преобладает проли­ферация гранулоцитов — нейтрофилов и, особенно, эозинофилов, а также сое­динительнотканных клеток — гистиоци­тов. Эозинофилы, инфильтри­руя мышцы, придают им типичный зе­леноватый цвет.

Таким образом, макроосмотр и ги­стологические исследования заражен­ной саркоцистами свинины и говяди­ны выявляют прежде всего структур­ную деструкцию мышечной ткани — лейкоцитарные, гистиоцитарные, эози­нофильные крупно-очаговые инфиль­траты, ухудшающие качество мяса.

Изучались гистологические препараты мышечной ткани пищевода, сердца, ножек диафрагмы, крупа, брюшных мышц крупного рогатого скота с различной степенью пораже­ния ее саркоцистами (Н. С. Даныпин, М. С. Даныпина, 1974; М. С. Даньшина, Н. С. Даныпин, 1975, 1978). Саркоцистозную инвазию услов­но классифицировали как: сильную (свыше 60 саркоцист в 24 сре­зах), среднюю (21—60 саркоцист) и слабую (до 20 саркоцист). Всего исследовано 624 среза от 208 туш крупного рогатого скота, из них: 132 среза от 44 туш при слабой саркоцис­тозной инвазии; 108 срезов от 36 туш со средней степенью поражения, 279 срезов от 93 туш с сильной степенью поражения мышечной ткани саркоци­стами и 105 срезов от 35 туш здоро­вых животных.

При слабой степени саркоцистозной инвазии отсутствуют заметные па­томорфологические изменения в мы­шечных волокнах, удовлетворительно просматриваются поперечная и про­дольная исчерченность волокон, в ко­торых находятся саркоцисты, а также в смежных, непораженных. При этом саркоцисты часто занимают всю тол­щу волокна, отодвигая миофибриллы к периферии.

При средней степени саркоцистозиой инвазии мышечные волокна посте­пенно истончаются, теряют поперечную, а затем и продольную исчерченность в результате присутст­вия паразита и воздействия продук­тов его жизнедеятельности. В сильно деформированных мышечных волок­нах отмечаются явления коагуляционного некроза.

При сильной степени инвазирова-ния саркоцистами в результате глубо­ких   биохимических и физико-химических изменений в мышечной ткани, вызванных присутствием паразитов и воздействием продуктов их жизнедея­тельности, наблюдаются сероватый отек мышечной ткани, расплавление сарколем мышечных волокон и обна­жение миофибрилл, лизис ядер мы­шечных клеток. Интенсивно развива­ется межмускульная соединительная ткань. В местах локализа­ции саркоцист происходит атрофия и некроз участков мышечных волокон; различного размера инфильтраты со­стоят преимущественно из лимфоци­тов, плазматических клеток и единич­ных эозинофилов.

При органолептическом осмотре мяса, мышечная ткань которого в сильной степени заселена саркоциста­ми, отмечаются его серовато-желтая окраска, побледнение, повышенная гидремичность, дряблость, увеличен­ное количество соединительнотканных прослоек.

1.9.2. Оценка мяса.

Согласно действующим «Прави­лам ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов», при обнару­жении в мышцах саркоцист, но отсут­ствии в них патологических изменений тушу выпускают без ограничений. При наличии саркоцист и изменений в мышцах (истощение, гидремия, разра­стание соединительной ткани, блед­ность мышечной ткани и др.) туши убойных животных направляют на техническую утилизацию. Свиной шпик и внутренний жир используют без ограничений.

С. А. Лубянецкий (1956)   предлагает различать три стадии саркоцистоза и соответственный подход к оценке мя­са.   Первая   стадия  характеризуется изменением только лимфатических уз­лов, со слабой интенсивностью пора­жения   мышц   саркоцистами мясо может выпускаться   без ограничений. Для второй стадии саркоцистоза ха­рактерны увеличение и отечность лим­фатических узлов,   гидремия   мышц, сильное поражение мышц саркоциста­ми — мясо считается условно годным. При третьей стадии заболевания, ко­торое определяется наличием генера­лизованных инфильтратов, мясо в пи­щу непригодно.

В. М. Митрофанов (1976) рекомендует бра­ковать группы мышц или отдельные мышцы, где саркоцисты заметны не­вооруженным глазом, остальную часть туши использовать на общих основа­ниях. Если же саркоцистами поражается большинство мышц в туше, она должна целиком уничтожаться или утилизироваться.

В пищу людям непригодными счита­ются части туши, сильно пораженные саркоцистами, с глубокими измене­ниями в мышцах; остальные части можно реализовать на общих основа­ниях. Не допускается в пищу мясо с сильной гидремией или с измененной окраской.

1.9.3. Обезвреживание мяса, инвазированного саркоцистами.

А. А. Богуш (1976) предлагает обез­вреживать сильно пораженную свини­ну провариванием в течение 3 часов в открытых котлах, затем выдержива­нием в течение 45 минут в стерилиза­торах В-2 ФОА под давлением   0,3 атм   до   достижения 85°С внутри куска мяса. Свинина, об­работанная таким способом, не вызы­вала болезненных проявлений у кро­ликов при введении им 12 мл мясного экстракта.

А.Г. Какурина (1978) рекомендует мясо со средней и слабой степенью инвазии при хорошей упи­танности и органолептике   подвергать обезвреживанию (после 24-часовой выдержки в остывочной камере) за­мораживанием  при температуре в толще мышц —25° С для баранины и —30° С для говядины с экспозицией 72 часа. Туши ниже средней упитан­ности при сильной степени инвазии следует обезвреживать путем обработ­ки высокой температурой согласно правилам санитарно-ветеринарной экс­пертизы, а при плохой органолептике направлять на техническую   утилиза­цию. Сердце и мышцы диафрагмы во всех случаях рекомендуется обезвре­живать воздействием высокой темпе­ратуры.

М. С. Даныпина (1974), М. С. Даныпина и В. П. Заболоцкий (1976) считают, что замораживание говяди­ны, инвазированной саркоцистами, в течение 24, 48 и 116 часов при —18°С не обеспечивает полной гибели трофозоитов саркоцист. Так, при заморажи­вании говядины в течение 24 часов гибнет до 47% трофозоитов, а на про­тяжении 116 часов - до 88%. Полная гибель трофозоитов саркоцист отмеча­ется при замораживании говядины в течение 24 часов при -27° С.

Сухой посол говядины в течение 20 дней способствует полной гибели трофозоитов саркоцист. После 10-днев­ного посола гибнет до 94% трофозои­тов.

При 10-минутной варке пельменей и фрикаделек, приготовленных в соот­ветствии с действующими правилами, остались жизнеспособными соответст­венно 12 и 6% трофозоитов. При 2-ча­совой проварке мяса трофозоиты сар­коцист полностью разрушаются.

1.10. ПРОФИЛАКТИКА

К факторам, способствующим широкому распространению саркоцистозной инвазии, относятся:

1) отсутствие сплошной (круговой) изоляции комплексов (ферм) от внешней территории;

2) наличие на территории животноводческих комплексов и мясоперерабатывающих предприятий бродячих собак и кошек, большинство из которых при каждом самозаражении саркоцистозным мясом, как правило, выделяют с калом во внешнюю среду половые стадии развития определенных видов рода Sarcocystis;

3) огромное количество спороцист (инвазионных для сельскохозяйственных животных половых стадий), выделяемых одним плотоядным животным (до 200 млн) при разовом самозаражении саркоцистозом; высокая устойчивость спороцист во внешней среде (не менее года);

4) значительная устойчивость во внешней среде инвазионных мерозоитов саркоцист от овец: они заразны для дефинитивных хозяев (кошек, собак, человека) после 18-дневного хранения мяса при + 2°С. Высокая резистентность вегетативных стадий саркоцист к иммунологическому аппарату хозяина, выработанная в результате приспособления паразита к генетически однородному поголовью животных в комплексах;

5) недостаточная ветеринарно-санитарная экспертиза туши (или отсутствие таковой) на ММПКС, мясоперерабатывающих предприятиях, убойных пунктах и площадках хозяйств;

6) подворный убой домашних животных;

7) нарушение правил транспортировки животных, мяса и других продуктов животноводства;

8) нарушение санитарных правил, общей и личной гигиены на животноводческих комплексах, мясоперерабатывающих предприятиях, рынках, в продовольственных магазинах, местах общественного питания, в быту и др.

Профилактика саркоцистозной инвазии включает комплекс мероприятий, состоящий из организационно-хозяйственных мер, направленных на разрыв эпизоотической цепи, соблюдение ветеринарно-санитарного контроля при убое животных, а также правил общей и личной гигиены обслуживающим персоналом комплексов и кулинарной обработки продуктов животноводства.

В систему ветеринарных и организационно-хозяйственных мероприятий входят:

1) широкое информирование работников животноводства и населения о саркоцистозе животных, его клинических проявлениях, путях передачи инвазионного начала и причиняемом экономическом ущербе;

2) комплектование животноводческих комплексов здоровыми животными различных пород и обеспечение при этом карантинных мероприятий;

3) профилактика инфекционных и инвазионных заболеваний в период карантина животных и их дальнейшей эксплуатации, в том числе профилактические обработки ягнят (пассивная иммунизация против острых респираторных и кишечных заболеваний, применение средств, повышающих резистентность организма, обработка копыт дезинфицирующими растворами и др.), диагностические исследования, дегельминтизация, активные иммунизации и др.;

4) запрещение содержания на территории комплекса домашних животных и птиц, принадлежащих рабочим и служащим или другим лицам;

5) изолирование территории животноводческого комплекса (фермы) забором (сеткой) высотой не менее 1,8 м. Разрешение входа и въезда на территорию комплекса только через действующий ветсанпропускник, в состав которого входят: проходная, гардеробная, душевая с санузлом, помещение для глажения одежды, дезкамера для спецодежды, дезмойка для машин;

6) оборудование санпропускников дезваннами (дезбарьерами), а также дезковриками, насыщенными дезинфицирующим раствором;

7) изолирование карантинного отделения высоким забором, устройство на въездах и выездах дезбарьеров шириной 1,5 м и длиной 3 м;

8) обеспечение убойных пунктов (или убойных площадок) холодильной камерой, микроскопом МБИ-6 с бинокулярной насадкой для проведения саркоцистоскопии, проекционным трихинеллоскопом, компрессориумами (3—4 шт.), глазными изогнутыми ножницами (3—4 шт.), чашками для воды, марлей, ватой, дезсредствами (хлорамин Б, дезмол и др.), водопроводной водой; оцинкованными столами для разделки туш; электрокотлами емкостью 100 и 300 л с герметически закрывающимися крышками, установленными в отдельной комнате;

9) обезвреживание   на месте  вынужденно убитых животных и конфискатов;

10) проведение убоя и вынужденного убоя только на убойном пункте;

11) исследование туш органолептически, причем особо внимательно туш и паренхиматозных органов от вынужденно убитых животных;

12) при наличии 10 саркоцист в 24 срезах компрессориума обезвреживание мяса замораживанием в холодильной камере при температуре в толще мышц, равной —20°С, в течение 3 суток (при —27°С в течение 24 часов) или провариванием кусков мяса по 2—2,5 кг каждый в течение двух часов. Можно также использовать сухой посол мяса. Туши, сильно пораженные саркоцистами с выраженной гидремией и дряблостью мышц, а также трупы павших животных, забракованные туши и боенские отходы следует подвергать утилизации;

13) обязательное микроскопирование мышц сердца, пищевода, языка, диафрагмы, брюшных и ягодичных мышц с целью выявления микросаркоцист;

14) изолирование мест утилизации, захоронения трупов и боенских отходов от проникновения домашних и диких плотоядных, мелких хищников;

15) своевременный вывоз трупов павших животных в закрытых металлических контейнерах, исключающих доступ плотоядных животных, мышевидных грызунов и насекомых, на скотомогильники или ямы Беккари;

16) охрана кормов и источников водоснабжения животных от загрязнения ооцистами и спороцистами, т. е. половыми стадиями паразита, выделяемыми с фекалиями кошек, собак, человека;

17) содержание пастбища в надлежащем   ветеринарно-санитарном   состоянии;

18) изолирование, лечение или уничтожение собак,   кошек и других

плотоядных, выделяющих с фекалиями ооцисты и спороцисты. Не допускать на территорию животноводческого комплекса бродячих собак и кошек. Прифермских собак и кошек не реже одного раза в квартал исследовать на наличие половых кишечных стадий. Не скармливать непроваренное трупное мясо собакам, кошкам, птице;

19) содержание территории комплекса в чистоте, своевременное удаление остатков корма, навоза и других отходов;

20) тщательная уборка помещений, побелка кормушек и проходов, обработка дезсредствами предметов ухода, оборудования и другого инвентаря не реже одного раза в декаду в санитарные дни;

21) систематическая борьба с грызунами, мухами, тараканами и другими насекомыми на животноводческих фермах, в жилых и служебных помещениях, а также на объектах общественного питания;

22) строгое соблюдение правил общей и личной гигиены: категорически запрещается пробовать на вкус фарш и другие полуфабрикаты из баранины, свинины, говядины и мяса других животных; в обязательном порядке следует дезинфицировать руки, посуду и другой инвентарь после контакта с сырым мясом;

23) категорическое запрещение подворного убоя животных и употребление в пищу мяса без санитарно-ветеринарного контроля.






































Заключение.

Таким образом, в ходе написания данной курсовой работы нами были рассмотрены морфология возбудителя саркоцистоза у крупного рогатого скота, его влияние, как на животных, так и на качество мяса.

Также нами рассмотрен круг задач, которые мы поставили для себя на начальной стадии работы, а именно мы:

- дали определение болезни;

- ознакомились с историей изучения саркоцистоза;

- изучили морфологию и биологию развития возбудителя;

- изучили клинические проявления саркоцистоза;

- раскрыли механизмы патогенеза саркоцистоза крупного рогато скота;

- установили патоморфологические изменения в органах и тканях саркоцистозных животных;

-  изучили различные методы диагностики саркоцистоза;

- изучили особенности ветеринарно-санитарной экспертизы мяса, инвазированного цистами саркоцист.

   Прижизненная диагностика саркоцистоза до сих пор еще весьма трудоемка. С помощью серологических методов можно констатировать лишь сам факт наличия паразитов рода Sarcocystis у обследованных хозяев; однако определение до вида оказывается невозможным. Статистика заражения животных саркоспоридиями ведется в основном по данным исследования убойного материала. Было показано, что в ряде стран мира, в том числе и в бывшем СССР, экстенсивность заражения Sarcocystis крупного рогатого скота, овец и свиней достигает 70-100% (Вершинин, 1999).

Несмотря на достигнутые успехи в изучении саркоцистозов животных, их нельзя считать достаточными в отношении профилактики и ликвидации этих заболева­ний. Требуется дальнейшее изучение биологии и мор­фологии паразита, эпизоотологии, патологии и диагно­стики этого заболевания, а также правильного выбора наиболее эффективных средств для лечения и профи­лактики саркоцистозов животных.

Литература:

Бейер Т.В. (1989): Клеточная биология споровиков - возбудителей протозойных болезней животных и человека. Л. Наука. 184 с.

Вершинин И.И. (1996): Кокцидиозы животных и их дифференциальная диагностика. Екатеринбург. 264 с.

Радченко А.И. (1999): Современные представления о жизненных циклах цистообразующих кокцидий (Eucoccidiida, Sporozoa, Apicomplexa) // Цитология. Т. 41, № 6. С. 466-478.

Beaver P.C., Gadgil R.K., Morera P. (1979): Sarcocystis in man: a review and report of five cases // Amer. J. Trop. Med. Hyg. Vol. 28. P. 819-844.

Dubey J.P., Speer C.A., Fayer R. (1989): Sarcocystosis of animals and man. Florida: CRC Press, Inc. 215 p.
Авербах М. М., Мороз А. М., Апт А. С, Никоненко Б. В. Иммуногенетика инфек­ционных заболеваний. М.: Медицина, 1985.

Арнастаускене Т., Казлаускас Ю., Селюкайте 3. и др. О саркоцистозе крупного ро­гатого скота в Литовской ССР // Теоретические и практические вопр. паразитол. Материалы VIII Науч.-координац. конф. по пробл. паразитол. в Прибалтике Тарту, 1979. С. 14—15.

Арсентьева Н. Ф. Вопросы эпизоотологии саркоцистоза диких северных оленей Тай­мыра // Копытные фауны СССР. Экология, морфология, использование и охрана. Тез. докл. II Всесоюз. совещ. по копытным СССР. М., 1980. С. 129—132.

Балуца П. И. Сезонная поражаемость свиней саркоцистозом//Тр. Воронеж, с.-х. ин-та им. К. Д. Глинки, 1975. Т. 70. С. 67—72.

Бейер Т. В. Токсоплазмиды, их жизненные циклы и положение в системе//Парази­тология. 1977. Т. 11. С. 382—393.

Бейер Т. В. К вопросу об эволюции кишечных кокцидий. Эймеридные кокцидий // Кишечные простейшие. Вильнюс, 1982а. С. 15—21.

Бейер Т. В. Современное представление о систематическом положении Toxoplasma и родственных организмов//Ветеринария. 19826. № 1. С. 38—42.

Бейер Т. В., Полянский Ю. И. О положении токсоплазмид в системе простейших // Токсоплазмиды. Протозоология. Л.: Наука, 1979. Вып. 4. С. 6—22.

Бейер Т. В., Шибалова Т. А., Костенко Л. А. Цитология кокцидий. Л.: Наука, 1978.

Бердыев А. С. Саркоцисты диких млекопитающих Южного Туркменистана // Изв. АН ТССР. Серия биол. наук. 1982. № 3. С. 48—52.

Богуш А. А. Содержание свободных аминокислот в мясе свиней при саркоцистозе // Ветеринарная наука — производству. Минск.: Ураджай,  1974а. С.  131 —133.

Богуш А. А. Физико-биологические изменения в свинине, пораженной саркоцистами// Ветеринарная паука — производству. Минск: Ураджай, 19746. С. 175—178.

Богуш А. А. Влияние саркоцистозной инвазии на качество свинины // Ветеринария. 1975. № 8. С. 101—103.

Богуш А. А. Саркоцистоз свиней в зависимости от возраста и технологии содержа­ния животных//Материалы II Всесоюз. съезда протозоол. Ч. 3. Киев: Наукова думка, 1976а. С. 18—19.

Богуш А. А. Паразитозы мышц свиней и меры их профилактики. Минск: Ураджай, 19766.

Богуш А. А. Токсичность пораженного саркоцистами мяса и способы его обезврежи­вания // Ветеринарная наука — производству. Минск: Ураджай, 1977. С. 121—126.

Богуш А. А. К вопросу о ветерипарно-санитарной оценке свинины при саркоцистозе в условиях промышленного производства // Ветеринарная наука — производству. Минск: Ураджай, 1978. С. 131 — 134.

Богуш. А. А.. Пышко И. И. Распространение саркоцистоза среди животных в Бело­руссии//Тр. Белорус н.-и. вет. станции. Минск, 1974. Т. 12. С. 130—132.

Богуш А. А., Урбанович Н. А. Обсеменение микрофлорой мяса и органов свиней и крупного рогатого скота при саркоцистозе // Ветеринарная наука — производству. Минск: Ураджай, 1977. С. 117—121.

Богуш А. А., Литвяк В. С, Урбанович Н. А. Аминокислотный состав протеина мы­шечной ткани при разной технологии откорма свиней // Достижения ветеринар­ной науки и передового опыта — животноводству. Минск: Ураджай. 1978. С. 103—105.

Бритое В. А. Саркоспоридиоз животных на Дальнем Востоке//Тр. Дальневост. н.-и.

вет. ин-та. Благовещенск, 1970. Т. 5. Вып. 1. С. 51—53. Буртикашвили П. С. Саркоцистоносительство свиней в Грузинской ССР//Материалы

1974. Т. 1. С. 313.

Вершинин И. И. О цикле развития Sarcocystis tenella // Ветеринария. 1973. № 10. С. 75—78.

Вершинин И. И. О цикле развития Sarcocystis hirsuta//Ветеринария. 1974. № 2. Вершинин И. И. Саркоцисты и родственные им организмы//Арахнозы и протозой-

ные болезни сельскохозяйственных животных. М.: Колос, 1977. С. 192—215. Вершинин И. И. Систематическое положение саркоспоридий, изоспор и родственных

им организмов//Тр. Свердлов, с.-х. ин-та, 1979. Т. 56. С. 106—114.

Вершинин И. И. Видовой состав саркоспоридий крупного рогатого скота и овец на Среднем Урале // Профилактика и лечение болезней сельскохозяйственных жи­вотных. Пермь, 1982а. С. 55—63.

Вершинин И. И. Саркоцистозы // Протозойные болезни сельскохозяйственных живот-пых. М.: Колос, 19826. С. 215-254.

Вершинин И. И. Биологические особенности саркоспоридий // Современные проблемы протозоологии. Материалы III съезда протозоол. Вильнюс, 1982в. С. 62.

Вершинин И. И. Аберрантные формы кишечных саркоспоридий и изоспор плотояд­ных животных//Кишечные простейшие. Вильнюс, 1982г. С. 35—39.

Вершинин И. И. Саркоспоридий (Sarcocystis) и саркоцистозы // Теоретические и прак­тические вопросы ветеринарии. Тарту, 1983. Т. 2. С. 83—90.

Вершинин И. И., Петренко В. И., Леонтьева Ф. Ф. Развитие Sarcocystis tenella в культуре тканей при заражении цистозоитами//Токсоплазмиды. Л.: Наука, 1979. С. 115—116.

Вершинин И. И., Петренко В. И., Кундрюкова Л. И. и др. Патологоанатомические изменения при остром экспериментальном саркоцистозе телят//Профилактика и лечение болезней с.-х. животных. Пермь, 1982. С. 64—70.

Владимирова П. А. Цитировано по Рыбалтовскому О. В., 1965.— Лекция. Саркоцис­тозы, токсоплазмоз  и  бесноитиозы  сельскохозяйственных  животных.— М.,   1971.

Гадаев А. Саркоспоридий коз Ферганской области//Докл. АН УзССР. 1976. № 7. С. 67—68.

Гадаев А. О саркоцистозах у ослов (Equus asinus)//Узб. биол. ж. 1978. № 1. С. 47—48.

Гадаев А. Саркоцисты овец в Узбекистане//X Всесоюз. конф. по природной очаго­вости болезней. Душанбе, 1979. Тез. докл. Ч. 1. Алма-Ата, 1979. С. 104—105.

Гадаев А.. О саркоспоридиях сельскохозяйственных животных Ферганской области // Узб. биол. ж. 1983. № 1. С. 46—48.

Гадаев А.. Абиджанов А. А. О саркоспоридиях Узбекистана//Узб. биол. ж. 1976. № 4. С. 57—59.

Гадаев А., Абиджанов А. О цикле развития некоторых видов саркоцист в Узбеки­стане//Докл. АН УзбССР. 1977. № 10. С. 57—58.

Гадаев А., Абиджанов А. О саркоцистах диких плотоядных животных Узбекиста­на//Охрана животного мира и растений Узбекистана. Ташкент, 1978. С. 67—69.

Гадаев А., Абиджанов А. Зараженность животных саркоцистами в зависимости от сезона//Докл. АН УзбСССР. 1978. № 1. С. 70—71.

Голосницкий А. Бузаджи А. В. Распространение саркоспоридиозов среди убойных животных в Ростовской области//Сб. науч. работ Новочеркас. с.-х. ин-та, 1972. Вып   15. С. 227—231.

Голубков В. И. К вопросу эпизоотологии саркоцистоза среди крупного рогатого ско­та // Курганский ЦНТИ, 1971.

Голцбков В. И. Исследование говядины, пораженной саркоцистами // Ветеринария. 1973. № 7. С. 96.

Голубков В. И. Саркоцистоз птицы//Пищеводство. 1978. № 10. С. 44—45.

Голубков В. И. О цикле развития саркоцист//Ветеринария. 1980. № 6.

Голубков В. И. Метод выделения саркоцист//Ветеринария.  1981. № 10. С. 42—43.

Голубков В. И. Экспертиза мяса животных и птицы при саркоцистозе // Ветерина­рия. 1983. № 3. С. 72—73.

Голубков В. И., Рыбалтовский О. В., Кислякова 3. И. Плотоядные — источник зара­жения свиней саркоцистами//Ветеринария. 1974. № 11. С. 85—86.

Горбов Ю. К- О цикле развития саркоцист // Ветеринария. 1975. № 6. С. 72—74.

Горбов Ю. К- Экспериментальное заражение животных саркоцистами//Рост, разви­тие и болезни молодняка сельскохозяйственных животных. Саранск, 1976. Вып. 2. С. 145—152.

1974. Т. 1. С. 313.

Вершинин И. И. О цикле развития Sarcocystis tenella // Ветеринария. 1973. № 10. С. 75—78.

Вершинин И. И. О цикле развития Sarcocystis hirsuta//Ветеринария. 1974. № 2. Вершинин И. И. Саркоцисты и родственные им организмы//Арахнозы и протозой-

ные болезни сельскохозяйственных животных. М.: Колос, 1977. С. 192—215. Вершинин И. И. Систематическое положение саркоспоридий, изоспор и родственных

им организмов//Тр. Свердлов, с.-х. ин-та, 1979. Т. 56. С. 106—114.

Вершинин И. И. Видовой состав саркоспоридий крупного рогатого скота и овец на Среднем Урале // Профилактика и лечение болезней сельскохозяйственных жи­вотных. Пермь, 1982а. С. 55—63.

Вершинин И. И. Саркоцистозы // Протозойные болезни сельскохозяйственных живот-пых. М.: Колос, 19826. С. 215-254.

Вершинин И. И. Биологические особенности саркоспоридий // Современные проблемы протозоологии. Материалы III съезда протозоол. Вильнюс, 1982в. С. 62.

Вершинин И. И. Аберрантные формы кишечных саркоспоридий и изоспор плотояд­ных животных//Кишечные простейшие. Вильнюс, 1982г. С. 35—39.

Вершинин И. И. Саркоспоридий (Sarcocystis) и саркоцистозы // Теоретические и прак­тические вопросы ветеринарии. Тарту, 1983. Т. 2. С. 83—90.

Вершинин И. И., Петренко В. И., Леонтьева Ф. Ф.
Развитие Sarcocystis tenella в культуре тканей при заражении цистозоитами//Токсоплазмиды. Л.: Наука, 1979. С. 115—116.

Вершинин И. И., Петренко В. И., Кундрюкова Л. И. и др. Патологоанатомические изменения при остром экспериментальном саркоцистозе телят//Профилактика и лечение болезней с.-х. животных. Пермь, 1982. С. 64—70.

Владимирова П. А. Цитировано по Рыбалтовскому О. В., 1965.— Лекция. Саркоцис­тозы, токсоплазмоз  и  бесноитиозы  сельскохозяйственных  животных.— М.,   1971.

Гадаев А. Саркоспоридий коз Ферганской области//Докл. АН УзССР. 1976. № 7. С. 67—68.

Гадаев А. О саркоцистозах у ослов (Equus asinus)//Узб. биол. ж. 1978. № 1. С. 47—48.

Гадаев А. Саркоцисты овец в Узбекистане//X Всесоюз. конф. по природной очаго­вости болезней. Душанбе, 1979. Тез. докл. Ч. 1. Алма-Ата, 1979. С. 104—105.

Гадаев А.. О саркоспоридиях сельскохозяйственных животных Ферганской области // Узб. биол. ж. 1983. № 1. С. 46—48.

Гадаев А.. Абиджанов А. А. О саркоспоридиях Узбекистана//Узб. биол. ж. 1976. № 4. С. 57—59.

Гадаев А., Абиджанов А. О цикле развития некоторых видов саркоцист в Узбеки­стане//Докл. АН УзбССР. 1977. № 10. С. 57—58.

Гадаев А., Абиджанов А. О саркоцистах диких плотоядных животных Узбекиста­на//Охрана животного мира и растений Узбекистана. Ташкент, 1978. С. 67—69.

Гадаев А., Абиджанов А. Зараженность животных саркоцистами в зависимости от сезона//Докл. АН УзбСССР. 1978. № 1. С. 70—71.

Голосницкий А. Бузаджи А. В. Распространение саркоспоридиозов среди убойных животных в Ростовской области//Сб. науч. работ Новочеркас. с.-х. ин-та, 1972. Вып   15. С. 227—231.

Голубков В. И. К вопросу эпизоотологии саркоцистоза среди крупного рогатого ско­та // Курганский ЦНТИ, 1971.

Голцбков В. И. Исследование говядины, пораженной саркоцистами // Ветеринария. 1973. № 7. С. 96.

Голубков В. И. Саркоцистоз птицы//Пищеводство. 1978. № 10. С. 44—45.

Голубков В. И. О цикле развития саркоцист//Ветеринария. 1980. № 6.

Голубков В. И. Метод выделения саркоцист//Ветеринария.  1981. № 10. С. 42—43.

Голубков В. И. Экспертиза мяса животных и птицы при саркоцистозе // Ветерина­рия. 1983. № 3. С. 72—73.

Голубков В. И., Рыбалтовский О. В., Кислякова 3. И. Плотоядные — источник зара­жения свиней саркоцистами//Ветеринария. 1974. № 11. С. 85—86.

Горбов Ю. К- О цикле развития саркоцист // Ветеринария. 1975. № 6. С. 72—74.

Горбов Ю. К- Экспериментальное заражение животных саркоцистами//Рост, разви­тие и болезни молодняка сельскохозяйственных животных. Саранск, 1976. Вып. 2. С. 145—152.

Загаевский И. С. О влиянии условий кормления и предубойного содержания живот­ных на гликолиз и сроки хранения мяса//Мясная индустрия СССР, 1961, № 2.

С. 33. ^

Загаевский И. С. О резервуарах сальмонелл у некоторых видов домашних животных //

Гигиена и санитария, 1966. № 1. С. 109. Загаевский И. С. Влияние некоторых патологических процессов у крупного рогатого

скота па обсеменеиность стафилококками мышц и внутренних органов // Bichhk

сельскогос. науки. 1967. № 6. С. 109. Загаевский И. С. Пищевые отравления микробной этиологии. Белая Церковь,  1967. Загаевский И. С. Влияние на качество мяса условий подготовки животных к убою.

Бе пая Церковь, 1970.

Засухин Д. Н.  Некоторые новые данные в изучении саркоцист и саркоцистозов //

Актуальная проблема токсоплазмоза. М.: Госснаб СССР, 1972. С. 137—147. Засухин Д. И. Ппоблемы токсоплазмоза. М.: Медицина, 1980.

Засухин Д. Н., Вельяминов К- С, Дьяконов Л. П. Саркоцистоз животных // Ветери­нария  1979. № 1. С. 49—55.

Захарив Я. Г. Некоторые гистохимические, биохимические и микробиологические по­казатели в мясе и печени при фасциолезе крупного рогатого скота и роль де­гельминтизации в повышении мясной продуктивности животных: Авторсф. дис. ... канд. вет. наук. Львов, 1971.

Ежова Т. А. Развитие саркоспоридий свиней в культуре клеток при заражении цисто-зоитами. Тр. АН ЛитССР. 1985. 13. № 1/89. С. 81—86.

Ильинская Р. Д. Значение эптеропатогенных штаммов Е. coli при желудочно-кишеч­ных заболеваниях телят//Ветеринария, 1963. № 12. С. 58—59.

Казакаускайте Я. С. Электронно-микроскопическое исследование процессов деления в цистах саркоспоридий Sarcocystis ovifelis//Цитология. 1980. Т. 22. № 10. С. 1170—1174.

Казакаускайте Я. С. Ультраструктура цистных стадий Sarcocystis ovifelis Heydorn et al., 1975 //Кишечные простейшие. Вильнюс, 1982. С. 62—66.

Казакаускайте Я. С, Сидоренко Н. В. Электронно-микроскопическое изучение цисты саркоспоридий Sarcocvstis ovifelis // Цитология, 1980а, Т. 22. № 10. С. 1163—1169.

Казакаускайте Я. С. Сидоренко Н. В. Этектоонпо-^икооскопическое изучение про­цесса эндодиогении в цистах Sarcocvstis ovifelis//Материалы Всесоюз. симп. по кишечным простейшим. Вильнюс, 19805. С. 50—61.

Казакаускайте Я- С, Сидоренко И. В. Электронно-микроскопическое изучение про­цесса эндодиогении в цистах Sarcocystis ovifelis//Кишечные простейшие. Виль­нюс, 1982. С. 66—69.

Какурина А. Г. Качественные показатели мяса убойных животных при саркоцисто­зе//Проблемы повышения ветеринарно-санитарного качества и биологической цен­ности продуктов питания животного происхождения и животноводческого сырья. М.: Колос, 1976. С. 55—56.

Какурина А. Г. Качественные показатели мяса убойных животных пои саркоцисто­зе // Повышение качества продуктов животноводства. М.: Колос, 1978. С. 125—131.

Кивирига Н. Ф., Довбенко Н. Н.,~ Гуцуляк П. В. Изменение качества мяса овец пои саркоцистозе//Профилактика паразитарных болезней животных. Кишинев, 1985. С. 20—24.

Кислякова 3. И. Саркоцистоз свиней//Свиноводство. 1972. № 2. С. 38.

Кислякова 3 И. О пораженности крупного рогатого скота саркоцистами и их мор­фология // Ветеринарная наука — производству. Тр. Белорус, н.-и. вет. ин-та, 1973. Т. 11. С. 165-171.

Кислякова 3. И. Экстенсивность и интенсивность поражения мышц крупного рогато­го скота саркоцистами//Достижени" ветеринарной науки и передового опыта — животноводству. Минск. 1976. Вып. 2. С. 50—52.

Кислякова 3. И., Дрогун А. Г. Патоморфологические изменения в мышечной ткани при саркоцистозе крупного рогатого скота // Науч.-техн. ипформ. БССР по сель­скому хозяйству. Минск, 1976. № 1. С. 15—21.

Кислякова 3. И.. Рыбалтовский О. В. Саркоцистозы сельскохозяйственных животных. М.: ВНИИТЭИ по сельскому хозяйству, 1980.

Козелкин П. М. Сповозоиты (саркоспоридий) в мышце сердца крупного рогатого скота в связи с Miocarditis // Ветеринарное дело. 1928. № 8(57). С. 32—34.

Колабский И. А., Тавердян Т. Н., Ляус В. Г. О распространении саркоспоридий и некоторых вопросах их локализации в организме домашних животных // Сб. науч. тр. Леиингр. н.-и. вет. ин-та, 1964. Вып. 26. С. 80—86.

Кондратьев И. А. Вторичные паратифозные заболевания и паратифозное бактерионо­сительство у крупного рогатого скота: Автореф. дис. ... канд. вет. наук. М., 1953.

Кононенко Г. В. К распространению микросаркоспоридиоза среди овец // Ветерина­рия. 1967. № 12. С. 53—54.

Кононенко Г. В. К распространению саркоспоридиоза среди овец//Тр. Ульянов с-х ин-та, 1967. Т. 12. Вып. 1. С. 198—206.

Кононенко Г. В. Обезвреживание мяса больных микросаркоспоридиозом овец//Тр Ульянов, с.-х. ин-та, 1967. Т. 14. Вып. 1. С. 74—80.

Кононенко Г. В. Патоморфологические изменения мышечной ткани овец при микро-саркоспоридиозе//Тр. Ульянов, с.-х. ин-та, 1967. Т. 14. Вып. 1. С. 82—86.

Кононенко Г. В. Материалы по микросаркоспоридиозу овец левобережья Ульянов­ской области: Автореф. дис. ... канд. вет. наук. 1968.

Кураев Г. Саркоцистоз верблюдов//Ветеринария. 1981. № 7. С. 41—42.

Кураев Г. Т. Пораженность саркоцистозом верблюдов на юге Казахстана и роль собак в передаче Sarcocystis camelli Masson, 1919//Совр. пробл. протозоол. Виль­нюс, 1982. С. 192.

Левченко Н. Г. К вопросу о вредоносности Sarcocystis tenella Railliet, 1886 //Пара­зиты с.-х. животных Казахстана. Алма-Ата: АН Каз. ССР, 1963. Вып. 2. С. 158—162.

Левченко Н. Г. К вопросу о делении «спор» саркоспоридий овец Sarcocystis tenella Railliet, 1886//Тр. Ин-та зоологии АН КазССР. Алма-Ата: АН КазССР 1963 Т. 19. С. 245—246.

Левченко Н. Г. Некоторые возрастные и сезонные особенности морфологии цист Sarcocystis tenella Railliet, 1886//Тр. Ин-та зоологии АН КазССР Алма-Ата-АН КазССР, 1963. Т. 19. С. 60—64.

Левченко Н. Г. О распространении саркоспоридий овец (Sarcocystis tenella) на юго-востоке Казахстана//Паразиты с.-х. животных Казахстана. Алма-Ата-АН КазССР, 1963. Вып. 2. С. 154—157.

Левченко Н. Г. О саркоспоридиозной инвазии овец на юго-востоке Казахстана // Вестн. с.-х. науки. 1963. № 1. С. 73—76.

Левченко Н. Г. Саркоспоридий овец юго-востока Казахстана: Автореф. дис. ... канд. вет. наук. Алма-Ата, 1963.

Левченко Н. Г., Поломошнов А. П., Новак М. Д. и др. Саркоспоридий сельскохозяй­ственных животных в Казахстане // Совр. пробл. протозоол. Материалы к III съезду Всесоюз. об-ва протозоол. Вильнюс, 1982. С. 198.

Лубянецкий С. А. К эпизоотологии саркоспоридиоза//Тр. Ульянов, с.-х. ин-та, 1956. Т. 4. С. 15—120.

Лубянецкий С. А. Ветеринарно-санитарная экспертиза мясопродуктов при саркоспо-ридиозе животных: Автореф. дис. ... докт. вет. наук. Ульяновск, 1956.

Лубянецкий С. А. Ветеринарно-санитарная экспертиза мясопродуктов при саркоспо-ридиозе животных: Автореф. дис. ... докт. вет. наук. Ульяновск, 1956.

Мачульский С. Н., Фомина М. И. Саркоцистоз овец в Бурятской АССР // Сб. науч. работ Сиб. н.-и. вет. ин-та, 1979. Вып. 35. С. 108—109.

Мачульский С. Н'., Фомина М. И. Эпизоотология саркоцистоза свиней в Бурятии // Ветеринария. 1980. № 5. С. 46—47.

Мачульский С, Шпбаев С. Фомина М. Саркоцистоз лошадей в Бурятской АССР и Монгольской Народной Республике//Паразиты животных и вредителей расте­ний Прибайкалья и Забайкалья. Улан-Удэ, 1979. С. 72—76.

Метсис А. Л. Определение количества ДНК в ядрах цистных стадий Sarcocystis bovicanis Heydorn et al., 1975 (Sporozoa. Anicomplexa)//Экспериментальная био­логия (Копф. молодых ученых). Таллин, 1985. С. 59—63.

Митрофанов В. М. Морфологические изменения в поперечно-полосатой мускулатуре свиней при саркоспоридиозе и значение их для санитарной оценки свинины//Тр. Киргиз, с.-х. ин-та. Фрунзе. 1961. Т. 2. Вып. 2. С. 15—25.

Молев А. И.. Белоусова Р. В. Случай саркоспоридиоза у свиней в Тончиханском районе//Тр. Алтайск. с.-х. ин-та (Ветеринария). Барнаул, 1971. С. 101 —104.

Mt/таходжаев М. Саркоспоридиоз животных//Сельское хозяйство Таджикистана, 1969а. № 8. С. 7—18.

Мутаходжаев М. Экспериментальный саркоспоридиоз и гематологические показатели у млекопитающих в северном Таджикистане//Докл. АН ТаджСССР. 19696. Т. 12. № 9. С. 72—74.

Нефедьева Н. П. Роль мяса и мясных продуктов как причины бактериальных пище­вых отравлений // Материалы Всесоюз. конф. по гигиене производства мяса и мясопродуктов. М., 1969. С. 15—20.

Ничипорук В. С. Пути обсеменения мясного сырья, используемого для изготовления колбас//Материалы Всесоюз. конф. по гигиене производства мяса и мясопродук­тов. М., 1969. С. 30—35.

Никольский С. Н., Позов С. А. Восприимчивость овец к саркоцистозу //Ветеринария. 1985. № 5. С. 50—52.

Павловский П. Е. Автолитические превращения гликогена при охлаждении и замо­раживании мышечной ткани//Биохимия. 1956. Т. 21. № 5. С. 616—622.

Павловский П. Е. Автолитические изменения в измельченной мышечной ткани //Мяс­ная индустрия СССР. 1957. № 2. С. 42—44.

Пак С. М., Перминова В. В., Дымкова Н. Д. и др. Саркоспоридий собаки, волка, корсака//Саркоспоридий животных в Казахстане. Алма-Ата: Наука, 1984. С. 53—54.

Панасюк Д. И., Минтюгов В. Н., Быкова Е. П. и др. Видовая специфичность и па­тогенность саркоспоридий для сельскохозяйственных животных//Материалы I съезда Всесоюз. об-ва протозоол. Баку: ЭЛМ, 1971. С. 249—250.

Панасюк Д. И., Минтюгов В. П., Пятое М. В. и др. К видовой специфичности сар­коспоридий // Ветеринария. 1971. № 4. С. 65—67.

Панасюк Д. П., Соминский 3. Ф., Кононенко Г. В. Патогенное действие саркоспори­дий на организм овец//Успехи протозоол. Л.: Наука, 1969. С. 255—256.

Пасько С. Г., Агарков Е. М. К вопросу саркоспоридиоза свиней//Диагностика, лече­ние и профилактика заболевания сельскохозяйственных животных Нау'ч тр Ставропол. с.-х. ин-та, 1972. Вып. 35. Т. 5. С. 119—121.

Пасько С. Г., Пасько В. И., Сипко А. А. Патоморфологические изменения в сердце при саркоцистозе овец//Науч. тр. Ставропол. с.-х. ин-та 1979 Вып 42 Т 3 С. 45—47.

Пасько С. Г., Пасько В. И., Сипко А. А. Анатомические и гистологические измене­ния в скелетных мышцах при саркоцистозе овец // Диагностика, лечение, профи­лактика заболеваний сельскохозяйственных животных. Науч тр Ставропол с ин-та. 1982. Вып. 45. Т. 5. С. 59—61.

Пасько С. Г., Пасько В. И., Сипко А. А. Патоморфология саркоцистоза овец//Диаг­ностика, лечение, профилактика инфекционных и паразитарных заболеваний с.-х. животных. Ставрополь, 1983. С. 65—68.

Позов С. А. Новые данные о саркоцистозе овец//Диагностика, лечение, профилак­тика заболеваний с.-х. животных. Науч. тр. Ставропол. с.-х. ин-та, 1981 Вып 44. Т. 3. С. 96—98.

Позов С. А. К вопросу эпизоотологии и терапии саркоцистоза овец//Науч. тр. Ставропол. с.-х. ии-та, 1982. Вып. 45. Т. 5. С. 56—59.

Позов С. А. Реакция агглютинации при диагностике саркоцистоза овец // Диагности­ка, лечение, профилактика инфекционных и паразитарных заболеваний с.-х. жи­вотных. Ставрополь, 1983. С. 62—65.

Полубоярова Г. В., Хан Н. Г. Культивирование саркоцист в культуре клеток // Вопр. вет. паразитол. в Казахстане. Алма-Ата, 1982. С. 104—106.

Полянский Ю. И. Проблема вида и внутривидовая изменчивость в протозоологии // Вестн. АН СССР. 1982. № 3. С. 76—81.

Правила ветеринарно-санитарного осмотра убойных животных и ветеринарно-сани-тарной экспертизы мяса и мясопродуктов. М.: МСХ СССР, 1970.

Прус М. П. Симптомокомплекс и патологоапатомические изменения при остром экс­периментальном саркоцистозе ягнят //Бюл. ВНИИ эксперим. ветеринарии. М., 1982. Вып. 48. С. 49—51.

Прус М. П. Экспериментальный саркоцистоз (S. ovicanis Heydorn, 1975) у овец и собак: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. 1983.

Прус М. П. Экспериментальный саркоцистоз ягнят//Ветеринария. 1983. № 8. С. 39—41.

Радченко А. И. Светооптическое и электронно-микроскопическое исследования цисто-образующей кокцидий Sarcocystis muris//Цитология. 1986. Т. 28. № П. С. 1165—1174.

Райков И. Б. Ядро простейших. Морфология и эволюция. Л.: Наука. 1978.

Ременник И. А. Обссмененность туш бактериями кишечной палочки, стафилококка­ми и сальмонеллами // Науч. записки Белоцерков. с.-х. ин-та. 1967. Т. 16.

Рыбалтовский О. В. Саркоцистозы, токсоплазмоз и бесноитиозы сельскохозяйствен­ных животных. М., 1971.

Рыбалтовский О. В., Дудкина А. В., Рубина А. П, К вопросу о цикле развития сар­коцист // Ветеринария. 1973. № 11. С. 71.

Сентукайте Я-, Юкнис В. Исследование биологической ценности мяса крупного ро-
гатого скота при поражении саркоцистами//
Acta parasitologica Lituanica   1981
Т. 19. С. 67.
                                                                                      '

Симоварт Ю. О саркоспоридиозе крупного рогатого скота в Эстонской ССР // Дости­жения науки и практики в ветеринарии. Тарту. 1973. С. 51—52.


Симоварт Ю. А., Миллер И. В., Парре Ю. Ю. Саркоцистоз крупного рогатого скота в Эстонской ССР//Теоретические и практические вопр. ветеринарии Тарту 1983 Т. 3. С. 90—100.

Сичкар П. И. Источники обсеменения мяса стафилококками//Пищевая промышлен­ность. 1965. Вып. 1. С. 30—32.

Сичкар П. И. О некоторых факторах, способствующих накоплению стафилококками энтеротоксинов в мясе и мясопродуктах и их обезвреживание: Автореф. дис. канд. вет. наук. Киев, 1965.

Скугарев В. Н. Распространение и сезонная динамика микросаркоцистоза крупного рогатого скота и свиней в Киевской области // Пути увеличения производства и улучшения качества продукции земледелия и животноводства. Белая Церковь, 1980. С. 190—192.

Скугарев В. Н. Распространение саркоцистоза животных (на примере Киевской об­ласти) и физические методы воздействия на возбудителей инвазии: Автореф. дис. ... канд. вет. паук. Ставрополь, 1982.

Смородинцев И. А. Теория созревания мяса//Мясная индустрия СССР. 1939. № 3. С. 22—27.

Смородинцев И. А., Филиппова А. А. Динамика безазотистых экстрактивных веществ при автолизе мышечной ткани//Архив биол. наук. 1935. Т. 37. № 2. С. 469—480.

Соловьев В. И., Пиульская В. П.. Боткина А. Г. и др. Созревание мяса крупного рогатого скота//Тр. ВНИИМП. М., 1953. Вып. 5. С. 38—108.

Соловьев В. И. Биохимия созревания мяса: Автореф. дис. ... докт. вет. наук. М., 1965.

Степонян А. С. Саркоспоридиоз среди убойного скота Ереванского мясокомбината // Тр. Ереван, зоовет. ин-та, 1950. Вып. 12. С. 181 —196.

Степонян А. С. Быстрый метод диагностики жизнеспособности саркоспоридий//Тр. Ереван, зоовет. ин-та, 1955. Вып. 19. С. 15—38.

Столмакова А. И. Стафиллококковые пищевые интоксикации. Львов, 1959.

Улендеев А. И. Патогенные серотипы кишечной палочки, обнаруживаемые при ост­рых желудочно-кишечных заболеваниях телят//Ветеринария.  1963. № 5. С.  15.

Федосеенко В. М., Левит А. В. Электронно-микроскопическое изучение цист Sarco­cystis muris в скелетной мускулатуре белых мышей//Токсоплазмиды. Л., 1979. С. 106—110.

Филиппова Л. Ф., Устарханов П. Д. Саркоспоридий рогатого скота в Дагестане // Сб. науч. работ Дагестан, н.-и. вст. ин-та. Махачкала, 1974. Т. VI—VII. С. 205—210.

Хазанова В. В. Бактерии групп кишечной палочки как возможные возбудители пи­щевых отравлений//Гигиена и санитария, 1961. № 4. С. 81. Чистович Г. Н. Патогенез стафилококковой инфекции. М., 1962.

Якимов  В.   Л.   Паразиты   неопределенной  природы//Болезни  домашних   животных,

вызываемые простейшими (Protozoa). М.—Л.: Госиздат, 1931. С. 261—272. Abel К. Untersuchungen fiber das Vorkommen und das saisonbedingle Auftereten von

Sarcocystis miescheriana bei Schlaclitschweinen am Schlachthof Leipzig//Mh. Vet.

Med. 1963, Bd 18. S. 621—624. Afaf I. D., Shommeln A. M. Experimental transmission of Sarcocystis from cattle to

mice//Trop. Anim. Hlth. Prod. 1974. N 1. P. 58—59. Agrawal R.  V.,  Gupta O. P.. Nigam S.  P.  Sarcocystis infection in man//J. Assoc.

Phys. India. 1976. V. 24. P. 115—117. Aikawa M.. Komatu Y., Asai T. et al. Transmission and scanning   electron microscopy

of host cell entry by toxoplasma gondii//Am. J. Pathol. 1977. V. 87. P. 285—296. Aral II. S.  Sarcosporidiosis in two cases with trichinosis // J. Mt. Sinai Hosp. New

York, 1949. V. 15. P. 367—373. Ami E., Cosseddu A. Diffusionc e distribuzio nc dei Sarcosporidi negli animali da

macello in Sardegna//Clin. vet. 1977. An. 99. N 7. P. 322—327. D'Arrtgo S., Squillaci G. Reperto di Sarcocystis ncl miocardio umano//Parasitologia,

1962. 4. P. 101 — 103.



1. Статья на тему Николай Уранов Воспоминания и биография
2. Реферат Экологическая функция государства
3. Реферат Проявления тревожности у детей в возрасте 2-6 месяцев
4. Реферат Особенности умственного развития младших школьников
5. Реферат Бухгалтерский учет в страховых организациях 4
6. Реферат Радиация, использование и проблемы
7. Реферат Світовий ринок металу стан та перспективи для України
8. Реферат на тему Apperance Vs Realty In Hamlet Essay Research
9. Реферат на тему Психоанализ в продажах и рекламе
10. Курсовая Социальная мобильность в обществе, ее виды